摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
1 绪论 | 第10-22页 |
·木质素的生物降解概述 | 第10-11页 |
·木质素的组成 | 第10页 |
·木质素生物降解研究的目的及意义 | 第10-11页 |
·木材白腐菌 | 第11页 |
·白腐菌降解木质素酶系统 | 第11-17页 |
·白腐菌降解木质素酶系统的协同作用 | 第12-13页 |
·锰过氧化物酶(MnP)及其降解机制 | 第13-15页 |
·漆酶(Laccase)及其降解机制 | 第15-16页 |
·木质素过氧化物酶(LiP)及其降解机制 | 第16-17页 |
·锰过氧化物酶MnP的分子生物学研究进展 | 第17-20页 |
·MnP基因的克隆 | 第17页 |
·MnP基因克隆的RACE技术 | 第17-18页 |
·白腐菌的基因表达 | 第18-19页 |
·MnP基因的异源表达 | 第19页 |
·MnP基因的同源表达 | 第19-20页 |
·研究目的和意义 | 第20页 |
·研究的主要内容 | 第20-21页 |
·课题来源 | 第21-22页 |
2 白腐菌系统发育分析 | 第22-28页 |
·材料与方法 | 第22-23页 |
·供试菌种 | 第22页 |
·主要试剂 | 第22页 |
·主要仪器设备 | 第22页 |
·培养基 | 第22页 |
·ITS序列扩增与系统发育分析 | 第22-23页 |
·结果与分析 | 第23-26页 |
·猴头菇CB1的ITS序列与系统发育分析 | 第23-24页 |
·灰树花菌株迁西二号的ITS序列与系统发育分析 | 第24-26页 |
·本章小结 | 第26-28页 |
3 白腐菌的主要木质素降解酶系统的检测 | 第28-36页 |
·材料与方法 | 第28-29页 |
·供试菌种 | 第28页 |
·培养基 | 第28-29页 |
·产酶培养方式 | 第29页 |
·酶活测定方法 | 第29页 |
·结果与分析 | 第29-34页 |
·两种白腐菌在4种培养液中LiP的测定结果 | 第29-30页 |
·猴头菇在4种不同的培养液中MnP活性检测及偏差分析结果 | 第30-31页 |
·猴头菇在4种不同的培养液中漆酶活性检测及偏差分析结果 | 第31-32页 |
·灰树花在4种不同的培养液中MnP活性检测及偏差分析结果 | 第32-33页 |
·灰树花在4种不同的培养液中漆酶活性检测及偏差分析结果 | 第33-34页 |
·本章小结 | 第34-36页 |
4 猴头菇CB1锰过氧化物酶cDNA基因的克隆 | 第36-66页 |
·材料 | 第36-37页 |
·供试菌种 | 第36页 |
·主要试剂 | 第36页 |
·试验引物 | 第36-37页 |
·主要仪器设备 | 第37页 |
·方法 | 第37-46页 |
·主要培养基 | 第37页 |
·菌丝的收集 | 第37页 |
·基因组DNA的提取 | 第37-38页 |
·简并PCR | 第38页 |
·猴头菇总RNA的提取及DNA的消化 | 第38-39页 |
·RT-PCR | 第39-40页 |
·MnP基因的PCR产物的凝胶回收 | 第40页 |
·目的基因与T载体的连接 | 第40-42页 |
·3’RACE | 第42-43页 |
·5’RACE | 第43-44页 |
·猴头菇MnP全长cDNA的基因序列分析 | 第44-46页 |
·结果与分析 | 第46-64页 |
·基因组DNA的提取 | 第46页 |
·简并PCR | 第46页 |
·猴头菇丝总RNA的提取 | 第46-47页 |
·RT-PCR扩增cDNA目的基因 | 第47-48页 |
·3’RACE | 第48-50页 |
·5’RACE | 第50-52页 |
·MnP的全基因 | 第52-53页 |
·拼接得到猴头菇MnP全长cDNA序列 | 第53-55页 |
·猴头菇MnP的cDNA核苷酸序列的同源性比较 | 第55-56页 |
·猴头菇MnP蛋白结构分析 | 第56-64页 |
·本章小结 | 第64-66页 |
结论 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-75页 |
附录1 猴头菇CB1的ITS序列比对结果 | 第75-76页 |
附录2 灰树花迁西二号的ITS序列比对结果 | 第76-77页 |
附录3 猴头菇简并PCR序列比对结果 | 第77-78页 |
附录4 猴头菇RT-PCR序列比对结果果 | 第78-79页 |
附录5 猴头菇3’RACE序列及比对结果 | 第79-80页 |
附录6 猴头菇5’RACE序列及比对结果 | 第80-81页 |
附录7 猴头菇全基因序列及比对结果 | 第81-82页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |