| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第8-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-27页 |
| 第一章 植物与病原物的互作 | 第13-20页 |
| 1 植物抗病R基因 | 第13-16页 |
| 1.1 NBS-LRR-CC类蛋白 | 第14页 |
| 1.2 NBS-LRR-TIR | 第14页 |
| 1.3 跨膜受体激酶类(LRR-TM-PK)蛋白 | 第14页 |
| 1.4 胞外LRR蛋白 | 第14-15页 |
| 1.5 胞外LRR-PEST | 第15页 |
| 1.6 ETM-CC类 | 第15页 |
| 1.7 TIR-NBS-LRR-NLS-WRKY类 | 第15页 |
| 1.8 毒素还原酶类 | 第15-16页 |
| 2 病原菌Avr基因 | 第16页 |
| 3 R/Avr蛋白的互作机制 | 第16-17页 |
| 3.1 符合基因对基因关系的互作模式 | 第16-17页 |
| 3.2 非R/Avr基因互作模式 | 第17页 |
| 4 植物R基因介导的抗病信号传导 | 第17-20页 |
| 4.1 SA信号传导途径 | 第18页 |
| 4.2 ET和JA信号传导途径 | 第18-20页 |
| 第二章 番茄抗叶霉菌的分子生物学研究进展 | 第20-25页 |
| 1 C.fulvum Avr基因 | 第20-21页 |
| 1.1 无毒基因Avr2 | 第20页 |
| 1.2 无毒基因Avr4 | 第20-21页 |
| 1.3 无毒基因Avr4E | 第21页 |
| 1.4 无毒基因Avr9 | 第21页 |
| 1.5 无毒基因Avr5 | 第21页 |
| 2 Ecps | 第21-22页 |
| 3 番茄抗叶霉菌基因 | 第22-23页 |
| 3.1 Cf基因家族及其定位 | 第22页 |
| 3.2 Cf-Ecps基因 | 第22页 |
| 3.3 Cf基因产物结构与功能 | 第22-23页 |
| 4 番茄Cf基因抗病分子机制 | 第23-25页 |
| 4.1 番茄Cf与叶霉菌Avr的互作 | 第23页 |
| 4.2 番茄Cf与叶霉菌Avr互作下游信号传导 | 第23-25页 |
| 第三章 本课题研究的目的和意义 | 第25-27页 |
| 1 研究目的和意义 | 第25-26页 |
| 2 技术路线 | 第26-27页 |
| 第二部分 研究内容 | 第27-53页 |
| 第一章 一种新的转基因种子筛选方法 | 第27-34页 |
| 1 前言 | 第27-28页 |
| 2 材料和方法 | 第28-29页 |
| 2.1 生物试剂与植物材料 | 第28页 |
| 2.2 方法 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-33页 |
| 3.1 液体培养基用来筛选阳性转基因植株后代 | 第29-30页 |
| 3.2 无菌水替代液体培养基筛选阳性转基因植株后代 | 第30页 |
| 3.3 有菌条件完成阳性植株的筛选 | 第30页 |
| 3.4 1/2 MS液体培养基替代水完成阳性植株的筛选 | 第30-31页 |
| 3.5 有菌筛选方法用于拟南芥的筛选 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-34页 |
| 第二章 番茄Cf-4E基因遗传转化本氏烟植株 | 第34-53页 |
| 1 前言 | 第34-35页 |
| 2 材料和方法 | 第35-43页 |
| 2.1 生物试剂与溶液配制 | 第35页 |
| 2.2 实验所用菌株、载体和遗传转化植物材料 | 第35-36页 |
| 2.3 番茄pER8::Cf-4E和pER8:Avr4E载体的构建 | 第36-40页 |
| 2.4 番茄PER8::Cf-4E和pER8:Avr4E转化农杆菌GV3101 | 第40-41页 |
| 2.5 本氏烟的遗传转化 | 第41-43页 |
| 2.6 转基因本氏烟抗生素检测 | 第43页 |
| 2.7 转基因本氏烟雌二醇检测 | 第43页 |
| 2.8 雌二醇诱导种子萌发情况检测 | 第43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-52页 |
| 3.1 诱导型pER8::Cf-4E和pER8:Avr4E载体构建 | 第43-44页 |
| 3.2 转基因植株(本氏烟和番茄)的获得 | 第44-45页 |
| 3.3 转基因本氏烟的雌二醇检测 | 第45-46页 |
| 3.4 雌二醇诱导种子萌发情况检测 | 第46页 |
| 3.5 转基因本氏烟的卡平方值计算 | 第46-52页 |
| 4 讨论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-64页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
