| 中文摘要 | 第10-13页 |
| 英文摘要 | 第13-17页 |
| 1 前言 | 第17-29页 |
| 1.1 环境中腈污染的主要来源 | 第17页 |
| 1.2 环境中腈类化合物的主要处理方法 | 第17-18页 |
| 1.3 腈污染的微生物修复研究 | 第18-21页 |
| 1.3.1 腈类化合物的微生物降解 | 第18-19页 |
| 1.3.2 腈类化合物微生物降解的影响因素 | 第19-20页 |
| 1.3.3 微生物法在含腈废水处理中的应用及存在的主要问题 | 第20页 |
| 1.3.4 生物膜技术与废水的微生物修复 | 第20-21页 |
| 1.4 移动床生物膜反应器 | 第21-24页 |
| 1.4.1 移动床生物膜反应器简介 | 第21-22页 |
| 1.4.2 影响反应器运行的因素 | 第22-23页 |
| 1.4.3 移动床生物膜反应器的应用及存在的问题 | 第23-24页 |
| 1.5 生物强化技术 | 第24-25页 |
| 1.5.1 生物强化技术简介 | 第24-25页 |
| 1.5.2 生物强化技术的应用 | 第25页 |
| 1.6 微生物群落多样性及检测方法 | 第25-26页 |
| 1.7 红球菌对腈类化合物的降解及在生物修复中的应用 | 第26-27页 |
| 1.8 研究的目的与意义 | 第27-29页 |
| 2 Rhodococcus rhodochrous BX2对脂肪腈的降解机理研究 | 第29-60页 |
| 2.1 试验材料与仪器设备 | 第30-33页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第30页 |
| 2.1.2 主要药品与试剂 | 第30页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.1.4 主要培养基及试剂配制方法 | 第31-32页 |
| 2.1.5 引物序列 | 第32-33页 |
| 2.2 研究方法 | 第33-39页 |
| 2.2.1 脂肪腈及其微生物降解产物的检测 | 第33页 |
| 2.2.2 R.rhodochrous BX2总RNA提取 | 第33-34页 |
| 2.2.3 去除基因组DNA | 第34页 |
| 2.2.4 反转录生成cDNA | 第34页 |
| 2.2.5 脂肪腈降解酶的PCR扩增 | 第34-35页 |
| 2.2.6 脂肪腈降解酶的定量检测(qRT-PCR) | 第35页 |
| 2.2.7 无细胞提取液的获得 | 第35页 |
| 2.2.8 氨含量测定方法 | 第35-36页 |
| 2.2.9 酶活性测定方法 | 第36页 |
| 2.2.10 转录组试验研究方法 | 第36-39页 |
| 2.3 结果与分析 | 第39-57页 |
| 2.3.1 脂肪腈降解及动力学分析 | 第39-41页 |
| 2.3.2 脂肪腈微生物降解产物的确定 | 第41-45页 |
| 2.3.3 脂肪腈微生物降解产物含量的动态变化 | 第45-47页 |
| 2.3.4 脂肪酸的进一步降解 | 第47页 |
| 2.3.5 腈降解酶的mRNA表达分析 | 第47-49页 |
| 2.3.6 腈降解酶的酶活性分析 | 第49-50页 |
| 2.3.7 腈降解菌BX2的转录组分析 | 第50-57页 |
| 2.4 讨论 | 第57-58页 |
| 2.5 小结 | 第58-60页 |
| 3 Rhodococcus rhodochrous BX2降解丁烯腈特性研究 | 第60-79页 |
| 3.1 试验材料与仪器设备 | 第60-61页 |
| 3.1.1 菌种来源 | 第60页 |
| 3.1.2 主要药品与试剂 | 第60-61页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第61页 |
| 3.1.4 主要培养基及配制方法 | 第61页 |
| 3.2 研究方法 | 第61-64页 |
| 3.2.1 不同因素对丁烯腈降解的影响 | 第61-62页 |
| 3.2.2 丁烯腈降解条件的响应面分析 | 第62-63页 |
| 3.2.3 BX2对丁烯腈耐受能力研究 | 第63页 |
| 3.2.4 外源营养物质对BX2生长和降解丁烯腈的影响 | 第63页 |
| 3.2.5 丁烯腈样品的萃取 | 第63页 |
| 3.2.6 丁烯腈的气相色谱检测条件 | 第63-64页 |
| 3.3 结果与分析 | 第64-77页 |
| 3.3.1 丁烯腈气相色谱检测分析 | 第64-65页 |
| 3.3.2 腈降解菌R.rhodochrous BX2生长及降解特性研究 | 第65-68页 |
| 3.3.3 腈降解菌R.rhodochrous BX2降解条件的响应面分析 | 第68-74页 |
| 3.3.4 BX2对丁烯腈耐受能力研究 | 第74-75页 |
| 3.3.5 外加碳、氮源对R.rhodochrous BX2降解丁烯腈的影响 | 第75-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77页 |
| 3.5 小结 | 第77-79页 |
| 4 Rhodococcus rhodochrous BX2联合生物膜形成菌处理含丁烯腈废水研究 | 第79-107页 |
| 4.1 实验材料与仪器设备 | 第79-81页 |
| 4.1.1 菌株来源 | 第79页 |
| 4.1.2 试验药品试剂与耗材 | 第79-80页 |
| 4.1.3 培养基及试剂配制 | 第80页 |
| 4.1.4 试验仪器设备 | 第80-81页 |
| 4.1.5 引物序列 | 第81页 |
| 4.2 研究方法 | 第81-88页 |
| 4.2.1 生物膜形成菌对丁烯腈的耐受及利用 | 第81页 |
| 4.2.2 BX2与不同生物膜形成菌共培养的生物膜量测定 | 第81-82页 |
| 4.2.3 BX2与不同生物膜形成菌共培养对丁烯腈的降解 | 第82页 |
| 4.2.4 不同组合菌形成生物膜的抗冲击能力 | 第82-83页 |
| 4.2.5 BX2与生物膜形成菌联合处理含丁烯腈废水的研究 | 第83-85页 |
| 4.2.6 生物膜基因组DNA提取 | 第85-86页 |
| 4.2.7 测序文库的制备 | 第86页 |
| 4.2.8 高通量测序 | 第86页 |
| 4.2.9 测序质量分析 | 第86-87页 |
| 4.2.10 OTU及其丰度分析 | 第87页 |
| 4.2.11 生物膜样品RNA提取 | 第87-88页 |
| 4.2.12 生物膜腈降解酶的qRT-PCR过程 | 第88页 |
| 4.3 结果与分析 | 第88-103页 |
| 4.3.1 生物膜形成菌对丁烯腈的耐受及利用 | 第88-89页 |
| 4.3.2 BX2对生物膜形成菌成膜能力的影响 | 第89-90页 |
| 4.3.3 BX2与生物膜形成菌共培养对丁烯腈的降解 | 第90页 |
| 4.3.4 多物种生物膜对丁烯腈的抗冲击能力 | 第90-92页 |
| 4.3.5 不同反应器运行参数对丁烯腈去除效果的影响 | 第92-94页 |
| 4.3.6 BX2联合生物膜形成菌对丁烯腈废水的处理效果 | 第94-97页 |
| 4.3.7 载体上生物膜的检测 | 第97页 |
| 4.3.8 生物膜的微生物群落组成及多样性分析 | 第97-102页 |
| 4.3.9 生物膜腈降解酶基因的表达分析 | 第102-103页 |
| 4.4 讨论 | 第103-105页 |
| 4.5 小结 | 第105-107页 |
| 5 结论 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-126页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第126页 |
