| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-31页 |
| 1.1 腈水解酶 | 第13-18页 |
| 1.1.1 腈水解酶的来源 | 第13页 |
| 1.1.2 腈水解酶的作用机制 | 第13-14页 |
| 1.1.3 腈水解酶的应用 | 第14-18页 |
| 1.2 草铵膦 | 第18-25页 |
| 1.2.1 草铵膦的简介 | 第18-19页 |
| 1.2.2 L-草铵膦的合成方法 | 第19-25页 |
| 1.3 本论文的选题意义及研究内容 | 第25-27页 |
| 参考文献 | 第27-31页 |
| 第二章 检测方法 | 第31-39页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-33页 |
| 2.2.1 仪器和试剂 | 第32页 |
| 2.2.2 方法与条件 | 第32-33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.3.1 系统适用性实验 | 第33-34页 |
| 2.3.2 方法专属性 | 第34页 |
| 2.3.3 线性关系 | 第34页 |
| 2.3.4 重复性和精密度 | 第34页 |
| 2.3.5 检测限 | 第34-35页 |
| 2.3.6 回收率实验 | 第35页 |
| 2.3.7 流动相的选择 | 第35-36页 |
| 2.3.8 衍生化反应条件选择 | 第36-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-39页 |
| 第三章 产腈水解酶菌株的筛选鉴定 | 第39-52页 |
| 3.1 引言 | 第39-40页 |
| 3.2 材料与方法 | 第40-44页 |
| 3.2.1 土样 | 第40页 |
| 3.2.2 化学试剂与主要仪器 | 第40页 |
| 3.2.3 薄层色谱条件 | 第40-41页 |
| 3.2.4 HPLC条件 | 第41-42页 |
| 3.2.5 培养基 | 第42页 |
| 3.2.6 菌体制备及静息细胞转化 | 第42-43页 |
| 3.2.7 菌株筛选 | 第43页 |
| 3.2.8 形态特征观察 | 第43页 |
| 3.2.9 生理生化特征鉴定 | 第43页 |
| 3.2.10 基因组提取 | 第43页 |
| 3.2.11 16s rDNA序列扩增 | 第43-44页 |
| 3.2.12 系统发育学分析 | 第44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
| 3.3.1 腈水解酶产生菌的筛选 | 第44页 |
| 3.3.2 菌株鉴定 | 第44-50页 |
| 3.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-52页 |
| 第四章 Bacillus cereus ZJB-09280培养条件的研究 | 第52-66页 |
| 4.1 引言 | 第52-53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-54页 |
| 4.2.1 菌种 | 第53页 |
| 4.2.2 培养基 | 第53页 |
| 4.2.3 菌体培养 | 第53页 |
| 4.2.4 菌体制备 | 第53页 |
| 4.2.5 生物量测定 | 第53页 |
| 4.2.6 静息细胞转化条件 | 第53-54页 |
| 4.2.7 酶活的定义 | 第54页 |
| 4.2.8 分析方法 | 第54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-64页 |
| 4.3.1 产酶培养基组成的优化 | 第54-61页 |
| 4.3.2 其它培养条件对菌体生长和产酶的影响 | 第61-63页 |
| 4.3.3 菌体生长及产酶曲线 | 第63-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-66页 |
| 第五章 Bacillus cereus ZJB-09280静息细胞转化条件的研究及转化液中L-草铵膦的分离提取 | 第66-83页 |
| 5.1 引言 | 第66-67页 |
| 5.2 材料与方法 | 第67-70页 |
| 5.2.1 菌种 | 第67页 |
| 5.2.2 培养基 | 第67页 |
| 5.2.3 细胞培养条件 | 第67页 |
| 5.2.4 静息细胞转化 | 第67-69页 |
| 5.2.5 离子交换树脂 | 第69-70页 |
| 5.2.6 动态吸附分离实验 | 第70页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第70-80页 |
| 5.3.1 反应体系pH对菌体催化反应的影响 | 第70-71页 |
| 5.3.2 酶量对菌体催化反应的影响 | 第71-72页 |
| 5.3.3 反应温度对菌体催化反应的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.4 菌体热稳定性的研究 | 第73-74页 |
| 5.3.5 底物浓度对菌体催化拆分条件的影响 | 第74-75页 |
| 5.3.6 静息细胞使用批次的影响 | 第75-76页 |
| 5.3.7 酶促动力学的研究 | 第76-77页 |
| 5.3.8 穿透曲线的测定 | 第77-78页 |
| 5.3.9 洗脱曲线的测定 | 第78-79页 |
| 5.3.10 分离转化液中的L-草铵膦 | 第79-80页 |
| 5.3.11 L-草铵膦的提取 | 第80页 |
| 5.4 本章小结 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-83页 |
| 第六章 结论与展望 | 第83-86页 |
| 6.1 结论 | 第83-84页 |
| 6.2 展望 | 第84-86页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |