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果胶钙微球的制备及其在固定化肝肿瘤细胞中的应用

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
主要符号及缩略语表第20-21页
1 绪论第21-38页
    1.1 研究背景及意义第21页
    1.2 固定化细胞技术研究进展第21-24页
        1.2.1 固定化细胞及方法概述第21-22页
        1.2.2 固定化载体材料第22-24页
        1.2.3 常用天然载体材料存在的问题第24页
    1.3 果胶结构及性质第24-33页
        1.3.1 果胶的组成及结构第24-28页
        1.3.2 果胶的性质第28-31页
        1.3.3 果胶钙凝胶性能影响因素第31-33页
    1.4 果胶及果胶钙凝胶的应用第33-35页
        1.4.1 食品行业第33-34页
        1.4.2 医药领域第34-35页
        1.4.3 细胞固定化领域第35页
    1.5 果胶的纯化第35-36页
        1.5.1 脱色第35-36页
        1.5.2 小分子杂质的去除第36页
        1.5.3 除蛋白第36页
    1.6 本文的研究思路第36-38页
2 果胶钙微球用作固定化细胞载体的可行性第38-53页
    2.1 引言第38页
    2.2 实验部分第38-42页
        2.2.1 材料与仪器第38-39页
        2.2.2 果胶凝胶化键合能与反应热力学研究第39-40页
        2.2.3 果胶分子特性参数的测定第40页
        2.2.4 果胶钙微球制备第40页
        2.2.5 果胶钙微球性能评价第40-41页
        2.2.6 载细胞果胶钙微球制备第41页
        2.2.7 载细胞果胶钙微球评价第41-42页
    2.3 实验结果与讨论第42-52页
        2.3.1 果胶钙形成的键合作用力第42-43页
        2.3.2 果胶钙凝胶形成的反应热力学第43-44页
        2.3.3 果胶分子特性参数第44-46页
        2.3.4 果胶及果胶钙凝胶红外图谱第46-47页
        2.3.5 果胶形成凝胶的性能第47-48页
        2.3.6 果胶钙凝胶干燥失重及膨胀性能第48-49页
        2.3.7 果胶钙凝胶微球的微观形态第49-50页
        2.3.8 固定化细胞的增殖活性第50-52页
    2.4 小结第52-53页
3 果胶钙凝胶微球的制备及其优化第53-77页
    3.1 引言第53页
    3.2 实验部分第53-57页
        3.2.1 材料与仪器第53-54页
        3.2.2 不同酯化度果胶材料的制备第54页
        3.2.3 不同分子量果胶材料的制备第54-55页
        3.2.4 果胶分子特性参数的测定第55页
        3.2.5 果胶分子酯化度的测定第55页
        3.2.6 果胶分子结构的红外图谱第55页
        3.2.7 酯化度及浓度对果胶成凝胶性的影响第55-56页
        3.2.8 分子量及浓度对果胶成凝胶性的影响第56页
        3.2.9 钙离子浓度对果胶成凝胶性的影响第56页
        3.2.10 钙化时间对果胶成凝胶性的影响第56页
        3.2.11 实验设计与分析方法第56-57页
        3.2.12 统计学分析第57页
    3.3 结果与讨论第57-76页
        3.3.1 脱酯反应后果胶酯化度及分子特性参数第57-60页
        3.3.2 不同酯化度果胶红外图谱第60-61页
        3.3.3 不同分子量果胶分子特性参数第61-63页
        3.3.4 高压均质对果胶酯化度的影响第63页
        3.3.5 不同分子量果胶红外图谱第63-64页
        3.3.6 酯化度及浓度对凝胶形成及凝胶形态影响第64-65页
        3.3.7 酯化度对凝胶膨胀性能的影响第65-66页
        3.3.8 分子量及浓度对凝胶形成及凝胶形态影响第66-68页
        3.3.9 分子量对凝胶膨胀性能的影响第68-69页
        3.3.10 钙离子浓度及钙化时间对果胶钙凝胶性能的影响第69页
        3.3.11 果胶钙凝胶微球制备条件优化第69-76页
    3.4 小结第76-77页
4 果胶的纯化工艺第77-97页
    4.1 引言第77页
    4.2 实验部分第77-80页
        4.2.1 材料与仪器第77-78页
        4.2.2 果胶杂质最大吸收波长确定第78页
        4.2.3 微孔滤膜过滤第78页
        4.2.4 凝胶清洗法第78-79页
        4.2.5 吸附法第79-80页
        4.2.6 乙醇沉淀第80页
        4.2.7 杂质去除率计算第80页
        4.2.8 纯化果胶分子特性参数的测定第80页
        4.2.9 纯化果胶钙微球制备第80页
        4.2.10 纯化果胶钙微球性能评价第80页
        4.2.11 统计学分析第80页
    4.3 结果与讨论第80-96页
        4.3.1 果胶杂质最大吸收波长的确定第80-81页
        4.3.2 微滤去除杂质的效果第81-82页
        4.3.3 凝胶清洗去除杂质的效果第82-84页
        4.3.4 吸附法去除杂质的效果第84-89页
        4.3.5 果胶溶液乙醇沉淀第89-91页
        4.3.6 果胶纯化工艺建立第91-92页
        4.3.7 纯化果胶分子特性参数第92-93页
        4.3.8 纯化果胶果胶及果胶钙凝胶红外图谱第93-94页
        4.3.9 纯化果胶形成凝胶的性能第94-95页
        4.3.10 纯化果胶钙凝胶干燥失重及膨胀性能第95-96页
    4.4 小结第96-97页
5 果胶钙凝胶微球固定化肝肿瘤细胞第97-110页
    5.1 引言第97页
    5.2 实验部分第97-99页
        5.2.1 材料与仪器第97-98页
        5.2.2 载细胞果胶钙凝胶微球制备第98页
        5.2.3 微球粒径对载细胞果胶钙微球中细胞活性的影响第98页
        5.2.4 载细胞纯化果胶钙凝胶微球评价第98页
        5.2.5 果胶用于固定化细胞的机理研究第98-99页
        5.2.6 统计学分析第99页
    5.3 结果与讨论第99-109页
        5.3.1 载细胞果胶钙微球的微观形态第99-100页
        5.3.2 细胞增殖活性研究第100-103页
        5.3.3 微球粒径对细胞活性的影响第103-105页
        5.3.4 载细胞果胶钙凝胶微球元素分布及变化规律第105-107页
        5.3.5 载细胞果胶钙凝胶的分子构象及作用力变化第107-109页
    5.4 小结第109-110页
6 结论与展望第110-113页
    6.1 结论第110-111页
    6.2 创新点第111页
    6.3 展望第111-113页
参考文献第113-121页
附录A 试剂配制方法第121-122页
作者简介第122页
攻读博士学位期间科研项目及科研成果第122-124页
致谢第124页

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