| 主要缩略词表 | 第11-13页 |
| 中文摘要 | 第13-15页 |
| ABSTRACT | 第15-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-37页 |
| 1.1 土壤重金属污染植物提取修复 | 第19-21页 |
| 1.1.1 植物提取修复 | 第19页 |
| 1.1.2 植物提取技术存在的问题 | 第19-20页 |
| 1.1.3 提高植物提取效率的途径 | 第20-21页 |
| 1.2 内生菌强化植物提取土壤重金属的研究进展 | 第21-30页 |
| 1.2.1 植物内生菌群落组成 | 第21-23页 |
| 1.2.2 内生菌对植物生长的影响 | 第23-26页 |
| 1.2.3 内生菌对植物重金属吸收积累的影响 | 第26-30页 |
| 1.3 高浓度CO_2强化植物提取土壤重金属的研究进展 | 第30-33页 |
| 1.3.1 高浓度CO_2对植物生长的影响 | 第30-32页 |
| 1.3.1.1 高浓度CO_2对植物光合作用的影响 | 第30-31页 |
| 1.3.1.2 高浓度CO_2对植物根系发育的影响 | 第31-32页 |
| 1.3.2 高浓度CO_2对植物重金属耐性和吸收积累的影响 | 第32-33页 |
| 1.3.3 高浓度CO_2对根际微生物群落结构的影响 | 第33页 |
| 1.4 研究目的、内容与技术路线 | 第33-37页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第33-35页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第35-36页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第36-37页 |
| 第二章 内生菌Buttiauxella sp.SaSR13对超积累南景天生长和镉吸收的影响 | 第37-55页 |
| 2.1 引言 | 第37-39页 |
| 2.2 材料和方法 | 第39-45页 |
| 2.2.1 Buttiauxella sp. SaSR13的分离、鉴定和Gfp标记 | 第39-42页 |
| 2.2.2 植物培养和处理 | 第42-43页 |
| 2.2.3 内生菌定殖检测(LSCM) | 第43页 |
| 2.2.4 根系形态参数的测定 | 第43页 |
| 2.2.5 植物生物量和镉浓度的测定 | 第43-44页 |
| 2.2.6 植物叶绿素含量的测定 | 第44页 |
| 2.2.7 植物吲哚乙酸(IAA)和超氧阴离子(O_2·~-)含量的测定 | 第44页 |
| 2.2.8 根系分泌物的测定 | 第44-45页 |
| 2.2.9 数据统计分析 | 第45页 |
| 2.3 结果和分析 | 第45-52页 |
| 2.3.1 Buttiauxella sp. SaSR13在东南景天根内的定殖模式 | 第45页 |
| 2.3.2 接种SaSR13对植物生物量和镉浓度的影响 | 第45-47页 |
| 2.3.3 接种SaSR13对根系形态的影响 | 第47-48页 |
| 2.3.4 接种SaSR13对植物叶绿素含量的影响 | 第48-49页 |
| 2.3.5 接种SaSR13对植物吲哚乙酸(IAA)含量的影响 | 第49页 |
| 2.3.6 接种SaSR13对超氧阴离子(O_2·~-)含量的影响 | 第49-50页 |
| 2.3.7 接种SaSR13对根系分泌物的影响 | 第50-51页 |
| 2.3.8 内生菌Buttiauxella sp. SaSR13和内生菌Sphingomonas sp. SaMR12的比较 | 第51-52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-54页 |
| 2.5 结论 | 第54-55页 |
| 第三章 高浓度CO_2与内生菌互作对超积累东南景天光合特性和镉积累的影响 | 第55-72页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 材料和方法 | 第56-59页 |
| 3.2.1 植物和内生菌的培养 | 第56页 |
| 3.2.2 试验设计 | 第56-57页 |
| 3.2.3 内生菌定殖检测(LSCM) | 第57页 |
| 3.2.4 植物生物量和镉浓度的测定 | 第57页 |
| 3.2.5 光合Rubisco酶活性的测定 | 第57页 |
| 3.2.6 叶绿素含量和能量代谢酶活性的测定 | 第57页 |
| 3.2.7 气体交换的测定 | 第57-58页 |
| 3.2.8 叶绿素荧光参数的测定 | 第58页 |
| 3.2.9 基因表达水平分析 | 第58-59页 |
| 3.2.10 数据统计分析 | 第59页 |
| 3.3 结果和分析 | 第59-67页 |
| 3.3.1 水培试验内生菌在高低CO_2浓度下根内的定殖模式 | 第59-60页 |
| 3.3.2 植物生物量和镉含量 | 第60-61页 |
| 3.3.3 气体交换参数 | 第61-62页 |
| 3.3.4 Rubisco酶活性和叶绿素含量 | 第62页 |
| 3.3.5 叶片中Ca~(2+)-ATP酶和Mg~(2+)-ATP酶活性 | 第62-66页 |
| 3.3.6 叶绿素荧光 | 第66-67页 |
| 3.3.7 SaPsbS,SaLhcb2,SaHMA2和SaCAX2的基因表达水平 | 第67页 |
| 3.4 讨论 | 第67-71页 |
| 3.4.1 高浓度CO_2与内生菌互作提高了东南景天光合碳吸收速率 | 第67-69页 |
| 3.4.2 高浓度CO_2与内生菌互作提高了东南景天的电子传递和光系统Ⅱ活性 | 第69-70页 |
| 3.4.3 高浓度CO_2与内生菌互作提高了东南景天的生物量和镉积累量 | 第70-71页 |
| 3.5 结论 | 第71-72页 |
| 第四章 高浓度CO_2与内生菌互作对超积累东南景天根系形态以及微生物群落结构的影响 | 第72-107页 |
| 4.1 前言 | 第72-74页 |
| 4.2 材料和方法 | 第74-79页 |
| 4.2.1 植物材料,土壤性质和内生菌的培养 | 第74页 |
| 4.2.2 水培试验 | 第74页 |
| 4.2.3 土培试验 | 第74-75页 |
| 4.2.4 侧根和根毛的观察 | 第75页 |
| 4.2.5 NO的原位测定 | 第75页 |
| 4.2.6 乙烯含量的测定 | 第75-76页 |
| 4.2.7 超氧阴离子的原位测定 | 第76页 |
| 4.2.8 镉荧光探针的原位测定 | 第76页 |
| 4.2.9 土壤采集和植物收获 | 第76-77页 |
| 4.2.10 土壤性质的测定 | 第77页 |
| 4.2.11 土壤、根、叶际DNA的提取 | 第77-78页 |
| 4.2.12 16S rRNA和ITS测序数据分析和处理 | 第78-79页 |
| 4.2.13 PICRUSt功能预测 | 第79页 |
| 4.3 结果和分析 | 第79-103页 |
| 4.3.1 高浓度CO_2与内生菌互作对植物侧根和根毛的影响 | 第79-81页 |
| 4.3.2 高浓度CO_2与内生菌互作对植物根尖内源NO的影响 | 第81-82页 |
| 4.3.3 高浓度CO_2与内生菌互作对植物根系乙烯含量的影响 | 第82页 |
| 4.3.4 高浓度CO_2与内生菌互作对植物根系超氧阴离子含量的影响 | 第82-83页 |
| 4.3.5 高浓度CO_2与内生菌互作对植物根系镉吸收的影响 | 第83-84页 |
| 4.3.6 土培试验内生菌在高低CO_2浓度下根内的定殖模式 | 第84页 |
| 4.3.7 高浓度CO_2与内生菌互作对植物生长和镉含量的影响 | 第84-86页 |
| 4.3.8 高浓度CO_2与内生菌互作对土壤pH的影响 | 第86-87页 |
| 4.3.9 高浓度CO_2与内生菌互作对土壤酶和微生物生物量的影响 | 第87-89页 |
| 4.3.10 高浓度CO_2与内生菌互作对土壤微生物群落组成的影响 | 第89-99页 |
| 4.3.11 高浓度CO_2与内生菌互作对土壤、根内、叶际细菌群落基因功能的影响 | 第99-103页 |
| 4.4 讨论 | 第103-105页 |
| 4.5 结论 | 第105-107页 |
| 第五章 全文总结 | 第107-110页 |
| 5.1 主要研究结论 | 第107-108页 |
| 5.2 主要创新点 | 第108-109页 |
| 5.3 研究展望 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 攻读硕士学位期间主要成果 | 第132-133页 |
