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SIRT1介导的p53和FOXOs在氟诱导的小鼠MC3T3-E1细胞凋亡和自噬中的调控作用

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
英文缩略词对照表第13-15页
第一章 文献综述第15-35页
    1.1 氟中毒的研究现状及进展第15-16页
    1.2 氟中毒与骨损伤第16-17页
    1.3 氟与骨细胞第17-18页
    1.4 氟的作用过程第18-25页
        1.4.1 细胞呼吸链第18页
        1.4.2 细胞内膜渗透性与膜电位第18页
        1.4.3 ROS的产生第18-19页
        1.4.4 细胞坏死第19页
        1.4.5 凋亡第19-20页
        1.4.6 分泌,运输与回收小泡第20-21页
        1.4.7 转运蛋白第21页
        1.4.8 钙与磷酸转运蛋白第21页
        1.4.9 葡萄糖转运第21-22页
        1.4.10 Na+/K+-ATPase第22页
        1.4.11 囊性纤维化跨膜传导调节蛋白第22页
        1.4.12 转录作用第22-23页
        1.4.13 炎症反应第23页
        1.4.14 细胞迁移第23-24页
        1.4.15 细胞增殖与细胞周期第24-25页
    1.5 细胞凋亡与自噬的关系第25-29页
        1.5.1 TOR激酶路径在自噬与凋亡中的作用第26-27页
        1.5.2 Beclin 1在自噬与凋亡中的作用第27页
        1.5.3 Caspases对自噬的调控第27-28页
        1.5.4 抗凋亡FLIPs对自噬的调控第28页
        1.5.5 死亡相关蛋白激酶家族在凋亡与自噬中的作用第28页
        1.5.6 p53在凋亡与自噬中的作用第28-29页
    1.6 SIRT1在细胞凋亡与自噬中的作用第29-34页
        1.6.1 Sirtuins的发现过程第29页
        1.6.2 Sirtuins参与的生物学功能第29-30页
        1.6.3 SIRT1的调节机制第30-34页
    1.7 研究目的与意义第34-35页
第二章 氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞凋亡第35-52页
    2.1 引言第35页
    2.2 材料第35-38页
        2.2.1 细胞类型第35页
        2.2.2 主要仪器和耗材第35-36页
        2.2.3 主要试剂和试剂盒第36页
        2.2.4 实验所用溶液及其配制第36-38页
    2.3 方法第38-44页
        2.3.1 MC3T3-E1细胞培养第38页
        2.3.2 细胞传代第38页
        2.3.3 细胞冻存与复苏第38页
        2.3.4 实验分组第38-39页
        2.3.5 Annexin V-FITC/PI流式双染色检测氟诱导的MC3T3-E1细胞凋亡第39页
        2.3.6 RT-qPCR检测氟诱导的MC3T3-E1细胞凋亡第39-41页
        2.3.7 Western bloting检测氟诱导的MC3T3-E1细胞凋亡第41-42页
        2.3.8 显微镜观察高氟环境下MC3T3-E1细胞形态变化的影响第42页
        2.3.9 荧光显微镜检测氟诱导的MC3T3-E1细胞内ROS水平的变化第42-43页
        2.3.10 PI流式染色检测氟诱导的MC3T3-E1细胞周期变化第43-44页
        2.3.11 数据处理与统计第44页
    2.4 结果第44-49页
        2.4.1 氟化钠对MC3T3-E1细胞凋亡的影响第44-45页
        2.4.2 氟化钠对MC3T3-E1细胞凋亡相关蛋白表达的影响第45-47页
        2.4.3 氟化钠对MC3T3-E1细胞形态学变化的影响第47页
        2.4.5 氟化钠对MC3T3-E1细胞内ROS水平的影响第47-49页
        2.4.6 氟化钠对MC3T3-E1细胞周期的影响第49页
    2.5 讨论第49-51页
    2.6 小结第51-52页
第三章 氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬第52-59页
    3.1 引言第52页
    3.2 材料第52-54页
        3.2.1 主要仪器与耗材第52页
        3.2.2 主要试剂和试剂盒第52-53页
        3.2.3 MC3T3-E1细胞培养第53页
        3.2.4 实验分组第53页
        3.2.5 RT-qPCR检测氟诱导的MC3T3-E1细胞自噬第53-54页
        3.2.6 Western bloting检测氟诱导的MC3T3-E1细胞自噬第54页
        3.2.7 MDC法检测氟诱导的MC3T3-E1细胞自噬第54页
        3.2.8 数据处理与统计第54页
    3.3 结果第54-57页
        3.3.1 氟化钠对MC3T3-E1细胞自噬相关蛋白表达的影响第54-56页
        3.3.2 氟化钠对MC3T3-E1细胞内自噬小体的影响第56-57页
    3.4 讨论第57-58页
    3.5 小结第58-59页
第四章 SIRT1在MC3T3-E1细胞凋亡与自噬中的作用第59-84页
    4.1 引言第59页
    4.2 材料第59-65页
        4.2.1 主要仪器与耗材第59页
        4.2.2 主要试剂与试剂盒第59-60页
        4.2.3 MC3T3-E1细胞培养第60-61页
        4.2.4 实验分组第61页
        4.2.5 RT-qPCR检测氟化钠对MC3T3-E1细胞内SIRT1 mRNA表达变化的影响第61-62页
        4.2.6 SIRT1激活物SRT1720与抑制物Ex-527对MC3T3-E1细胞存活率的影响第62页
        4.2.7 荧光显微镜检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞内ROS水平变化的影响第62页
        4.2.8 PI流式染色检测氟诱导的MC3T3-E1细胞周期变化第62-63页
        4.2.9 Annexin V-FITC/PI流式双染色检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞凋亡的影响第63页
        4.2.10 Western bloting检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞凋亡的影响第63页
        4.2.11 MTT法检测氟环境下SIRT1与自噬对MC3T3-E1细胞存活率的影响第63-64页
        4.2.12 显微镜观察自噬对暴露于高氟环境下MC3T3-E1细胞形态变化的影响第64页
        4.2.13 RT-qPCR检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬的影响第64页
        4.2.14 Western bloting检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬的影响第64页
        4.2.15 荧光显微镜检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬的影响第64页
        4.2.16 激光共聚焦显微镜检测SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬的影响第64-65页
        4.2.17 Western bloting检测氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬中SIRT1介导的细胞路径第65页
        4.2.18 数据处理与统计第65页
    4.3 结果第65-78页
        4.3.1 氟化钠对SIRT1的影响第65-66页
        4.3.2 SIRIT1激活物SRT1720,抑制物Ex-527对MC3T3-E1细胞存活率的影响第66页
        4.3.3 SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞凋亡的影响第66-67页
        4.3.4 SIRT1对氟环境下MC3T3-E1细胞内ROS水平的影响第67-69页
        4.3.5 氟环境下SIRT1对MC3T3-E1细胞周期的影响第69页
        4.3.6 SIRT1在氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞凋亡中介导的细胞路径第69-70页
        4.3.7 氟环境下SIRT1对MC3T3-E1细胞存活率的影响第70-71页
        4.3.8 自噬对暴露于氟环境下MC3T3-E1细胞存活率的影响第71-72页
        4.3.9 自噬对暴露于高氟环境下MC3T3-E1细胞形态变化的影响第72-73页
        4.3.10 SIRT1对氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬的影响第73-77页
        4.3.11 SIRT1在氟化钠诱导的MC3T3-E1细胞自噬中介导的细胞路径第77-78页
    4.4 讨论第78-83页
    4.5 小结第83-84页
第五章 结论和创新点第84-85页
    5.1 结论第84页
    5.2 创新点第84页
    5.3 研究展望第84-85页
参考文献第85-100页
致谢第100-101页
个人简介第101页

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