| 中文摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-15页 |
| 第1章 绪论 | 第24-38页 |
| 1.1 2型糖尿病(type2diabetesmellitus,T2DM)相关空间记忆能力及认知功能障碍机制概述 | 第24-30页 |
| 1.1.1 胰岛素信号通路损伤 | 第25页 |
| 1.1.2 氧化应激 | 第25-26页 |
| 1.1.3 中枢神经系统炎症因子 | 第26-27页 |
| 1.1.4 神经元结构及数量改变 | 第27页 |
| 1.1.5 突触传递及突触可塑性 | 第27-29页 |
| 1.1.6 星形胶质细胞-神经元能量代谢偶联 | 第29-30页 |
| 1.2 星形胶质细胞-神经元代谢偶联的研究进展 | 第30-33页 |
| 1.2.1 星形胶质细胞的能量代谢 | 第30-32页 |
| 1.2.2 神经元的能量代谢 | 第32页 |
| 1.2.3 ANLS | 第32-33页 |
| 1.3 降糖药治疗糖尿病相关记忆及认知障碍的研究进展 | 第33-36页 |
| 1.3.1 胰高血糖素样肽1受体(glucagonlikepeptide1receptor,GLP-1R)激动剂和二肽基肽酶Ⅳ(dipeptidylpeptidaseⅣ,DPP-Ⅳ)抑制剂 | 第33-34页 |
| 1.3.2 噻唑烷二酮类药物 | 第34-35页 |
| 1.3.3 二甲双胍 | 第35页 |
| 1.3.4 胰岛素 | 第35-36页 |
| 1.3.5 磺脲类药物 | 第36页 |
| 1.4 本研究设计思路 | 第36-38页 |
| 第2章 降糖药改善高脂饮食诱导的C57BL/6J小鼠胰岛素抵抗 | 第38-70页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第38-47页 |
| 2.1.1 主要器材 | 第38-39页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第39-41页 |
| 2.1.3 实验溶液的配制 | 第41-46页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第46页 |
| 2.1.5 垫料与饲料 | 第46-47页 |
| 2.2 实验方法 | 第47-58页 |
| 2.2.1 动物模型的制备 | 第47-48页 |
| 2.2.2 OGTT | 第48页 |
| 2.2.3 动物躯体学测定 | 第48-49页 |
| 2.2.4 血清样本收集 | 第49页 |
| 2.2.5 血清胰岛素的测定 | 第49-51页 |
| 2.2.6 血脂的测定 | 第51-54页 |
| 2.2.7 海马和皮质组织的体外胰岛素激活 | 第54-55页 |
| 2.2.8 海马和皮质组织蛋白浓度的测定 | 第55-56页 |
| 2.2.9 Westernblot | 第56-58页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第58页 |
| 2.3 实验结果 | 第58-64页 |
| 2.3.1 动物模型进食量及能量摄入 | 第58-59页 |
| 2.3.2 动物模型躯体测定学指标 | 第59-60页 |
| 2.3.3 动物模型血糖、血脂及外周胰岛素抵抗的评价 | 第60-63页 |
| 2.3.4 降糖药改善高脂饮食诱导的小鼠中枢胰岛素抵抗 | 第63-64页 |
| 2.4 讨论 | 第64-69页 |
| 2.5 小结 | 第69-70页 |
| 第3章 降糖药改善中枢胰岛素抵抗小鼠空间记忆障碍 | 第70-80页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第70-71页 |
| 3.1.1 主要器材 | 第70页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第70页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第70-71页 |
| 3.2 实验方法 | 第71-74页 |
| 3.2.1 Morris水迷宫实验 | 第71-74页 |
| 3.2.2 统计学方法 | 第74页 |
| 3.3 实验结果 | 第74-77页 |
| 3.3.1 降糖药改善中枢胰岛素抵抗小鼠空间记忆障碍 | 第74-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77-79页 |
| 3.5 小结 | 第79-80页 |
| 第4章 降糖药调控中枢胰岛素抵抗小鼠脑组织结构、功能和代谢 | 第80-120页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第80-86页 |
| 4.1.1 主要器材 | 第80-81页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第81-84页 |
| 4.1.3 实验溶液的配制 | 第84-86页 |
| 4.1.4 实验动物 | 第86页 |
| 4.2 实验方法 | 第86-96页 |
| 4.2.1 海马和皮质样本收集 | 第86页 |
| 4.2.2 乳酸的测定 | 第86-88页 |
| 4.2.3 丙酮酸的测定 | 第88-90页 |
| 4.2.4 脑组织灌流取材 | 第90页 |
| 4.2.5 石蜡切片的制备 | 第90-91页 |
| 4.2.6 冰冻切片的制备 | 第91-92页 |
| 4.2.7 HE染色 | 第92-93页 |
| 4.2.8 尼氏染色 | 第93页 |
| 4.2.9 一步法TUNEL细胞凋亡检测 | 第93-94页 |
| 4.2.10 PAS染色 | 第94-95页 |
| 4.2.11 Westernblot | 第95-96页 |
| 4.2.12 统计学分析 | 第96页 |
| 4.3 实验结果 | 第96-112页 |
| 4.3.1 降糖药减轻中枢胰岛素抵抗小鼠脑组织结构损伤 | 第96-100页 |
| 4.3.2 降糖药改善中枢胰岛素抵抗小鼠脑组织细胞凋亡及衰老 | 第100-103页 |
| 4.3.3 降糖药改善中枢胰岛素抵抗小鼠神经元突触可塑性 | 第103-106页 |
| 4.3.4 降糖药调控中枢胰岛素抵抗小鼠脑组织代谢途径 | 第106-109页 |
| 4.3.5 降糖药调控中枢胰岛素抵抗小鼠脑组织代谢底物 | 第109-112页 |
| 4.4 讨论 | 第112-118页 |
| 4.5 小结 | 第118-120页 |
| 第5章 结论 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-156页 |
| 作者简介及科研成果 | 第156-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
