| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 主要符号对照表 | 第14-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-61页 |
| 1.1 生物矿化 | 第17-18页 |
| 1.2 生物矿物 | 第18-19页 |
| 1.3 碳酸钙 | 第19-27页 |
| 1.3.1 碳酸钙晶体结构 | 第19-20页 |
| 1.3.2 碳酸钙的制备研究进展 | 第20-27页 |
| 1.4 羟基磷灰石 | 第27-30页 |
| 1.4.1 羟基磷灰石的特点及应用 | 第27页 |
| 1.4.2 羟基磷灰石的制备方法 | 第27-30页 |
| 1.5 仿生合成 | 第30-33页 |
| 1.5.1 仿生合成的特点 | 第30页 |
| 1.5.2 仿生合成的研究现状 | 第30-33页 |
| 1.6 组氨酸 | 第33-34页 |
| 1.7 壳聚糖和聚乳酸的性质及应用 | 第34-41页 |
| 1.7.1 壳聚糖的性质 | 第34-35页 |
| 1.7.2 聚乳酸的性质 | 第35-36页 |
| 1.7.3 壳聚糖、聚乳酸的应用 | 第36-41页 |
| 1.8 本课题的研究内容的提出 | 第41-44页 |
| 1.8.1 课题的提出 | 第41-42页 |
| 1.8.2 课题的来源 | 第42页 |
| 1.8.3 课题的意义 | 第42页 |
| 1.8.4 课题的研究内容 | 第42-43页 |
| 1.8.5 课题的研究技术路线 | 第43-44页 |
| 1.8.6 课题的创新之处 | 第44页 |
| 参考文献 | 第44-61页 |
| 第2章 N–组氨酸壳聚糖的制备、表征及其性质研究 | 第61-76页 |
| 2.1 前言 | 第61-62页 |
| 2.2 实验部分 | 第62-65页 |
| 2.2.1 实验仪器及主要试剂 | 第62-63页 |
| 2.2.2 N–组氨酸壳聚糖的制备 | 第63-64页 |
| 2.2.3 N–组氨酸壳聚糖的结构初步分析 | 第64页 |
| 2.2.4 N–组氨酸壳聚糖 FT-IR 分析 | 第64页 |
| 2.2.5 N–组氨酸壳聚糖的1H NMR 分析 | 第64页 |
| 2.2.6 N–组氨酸壳聚糖的元素分析 | 第64页 |
| 2.2.7 N–组氨酸壳聚糖的 XRD 分析 | 第64页 |
| 2.2.8 N–组氨酸壳聚糖的热重分析 | 第64页 |
| 2.2.9 N–组氨酸壳聚糖生物支架的扫描电镜分析 | 第64-65页 |
| 2.2.10 N–组氨酸壳聚糖的孔隙率测试 | 第65页 |
| 2.2.11 N–组氨酸壳聚糖的 Zeta 电位测定 | 第65页 |
| 2.2.12 N–组氨酸壳聚糖的溶解性试验 | 第65页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第65-72页 |
| 2.3.1 N–组氨酸壳聚糖的结构初步分析 | 第65页 |
| 2.3.2 N–组氨酸壳聚糖的 FT-IR 分析 | 第65-66页 |
| 2.3.3 N–组氨酸壳聚糖的1H-NMR 分析 | 第66-67页 |
| 2.3.4 N–组氨酸壳聚糖的元素分析 | 第67-68页 |
| 2.3.5 N–组氨酸壳聚糖的 XRD 分析 | 第68-69页 |
| 2.3.6 N–组氨酸壳聚糖的热重分析 | 第69-70页 |
| 2.3.7 N–组氨酸壳聚糖的形貌分析 | 第70-71页 |
| 2.3.8 N–组氨酸壳聚糖的孔隙率分析 | 第71-72页 |
| 2.3.9 N–组氨酸壳聚糖的 Zeta 电位分析 | 第72页 |
| 2.3.10 N–组氨酸壳聚糖的溶解性研究 | 第72页 |
| 2.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第3章 NHCS/PLLA 支架的制备及其表征 | 第76-87页 |
| 3.1 引言 | 第76-77页 |
| 3.2 实验部分 | 第77-79页 |
| 3.2.1 实验仪器与药品 | 第77-78页 |
| 3.2.2 NHCS/PLLA 支架的制备 | 第78页 |
| 3.2.3 NHCS/PLLA 支架 FT-IR 分析 | 第78页 |
| 3.2.4 NHCS/PLLA 支架的 XRD 分析 | 第78-79页 |
| 3.2.5 NHCS/PLLA 支架热重分析 | 第79页 |
| 3.2.6 NHCS/PLLA 支架的扫描电镜分析 | 第79页 |
| 3.2.7 NHCS/PLLA 支架的孔隙率测试 | 第79页 |
| 3.2.8 NHCS/PLLA 支架的力学性能测定 | 第79页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第79-84页 |
| 3.3.1 NHCS/PLLA 支架 FT-IR 分析 | 第79-80页 |
| 3.3.2 NHCS/PLLA 支架的 XRD 分析 | 第80-81页 |
| 3.3.3 NHCS/PLLA 支架热重分析 | 第81-82页 |
| 3.3.4 NHCS/PLLA 支架的扫描电镜分析 | 第82-83页 |
| 3.3.5 NHCS/PLLA 支架的孔隙率分析 | 第83-84页 |
| 3.3.6 不同组成的 NHCS/PLLA 支架的力学性能分析 | 第84页 |
| 3.4 本章小结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-87页 |
| 第4章 NHCS 仿生合成羟基磷灰石研究 | 第87-107页 |
| 4.1 引言 | 第87-88页 |
| 4.2 实验部分 | 第88-90页 |
| 4.2.1 实验仪器与药品 | 第88页 |
| 4.2.2 HAP 的制备 | 第88-90页 |
| 4.3 样品测试 | 第90页 |
| 4.4 结果与分析 | 第90-104页 |
| 4.4.1 无添加 NHCS 体系制备 HAP | 第90-92页 |
| 4.4.2 NHCS 体系制备 HAP | 第92-103页 |
| 4.4.3 NHCS 不同投加量调控 HAP 的作用机理探讨 | 第103-104页 |
| 4.5 本章小结 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-107页 |
| 第5章 NHCS 仿生合成碳酸钙研究 | 第107-138页 |
| 5.1 引言 | 第107-108页 |
| 5.2 实验仪器和药品 | 第108页 |
| 5.3 实验方法 | 第108-110页 |
| 5.3.1 碳酸钙产品的制备 | 第108-110页 |
| 5.3.2 测定方法 | 第110页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第110-133页 |
| 5.4.1 纯水体系下制备碳酸钙 | 第110-112页 |
| 5.4.2 不同 NHCS 体系下仿生合成碳酸钙 | 第112-117页 |
| 5.4.3 NHCS 体系仿生合成碳酸钙 | 第117-129页 |
| 5.4.4 机理探讨 | 第129-133页 |
| 5.5 本章小结 | 第133-134页 |
| 参考文献 | 第134-138页 |
| 第6章 NHCS、NHCS/PLLA 支架吸附 BSA 研究 | 第138-155页 |
| 6.1 引言 | 第138-139页 |
| 6.2 实验部分 | 第139-142页 |
| 6.2.1 实验仪器及主要试剂 | 第139页 |
| 6.2.2 模拟体液、牛血清白蛋白标准溶液配制 | 第139页 |
| 6.2.3 最大波长的确定及标准曲线绘制 | 第139-140页 |
| 6.2.4 牛血清白蛋白的吸附研究 | 第140-141页 |
| 6.2.5 牛血清白蛋白的洗脱研究 | 第141-142页 |
| 6.3 结果与分析 | 第142-152页 |
| 6.3.1 牛血清白蛋白溶液最大吸收波长的确定 | 第142页 |
| 6.3.2 牛血清白蛋白溶液标准曲线的绘制 | 第142-143页 |
| 6.3.3 牛血清白蛋白的吸附研究 | 第143-152页 |
| 6.3.4 牛血清白蛋白的洗脱结果分析 | 第152页 |
| 6.4 本章小结 | 第152-153页 |
| 参考文献 | 第153-155页 |
| 第7章 主要结论、不足及展望 | 第155-158页 |
| 7.1 主要结论 | 第155-156页 |
| 7.2 不足之处 | 第156页 |
| 7.3 展望 | 第156-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
| 附录 | 第159-160页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文及研究成果 | 第160-161页 |
