| 中文摘要 | 第9-13页 |
| 英文摘要 | 第13-15页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 第一部分 FOXC2 促进多形性脑胶质母细胞瘤增殖、迁移与侵袭作用及其机制研究 | 第19-39页 |
| （二） 引言 | 第19-20页 |
| （三） 材料和方法 | 第20-28页 |
| 1.材料 | 第20-23页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第20页 |
| 1.2 仪器 | 第20-21页 |
| 1.3 人体组织和细胞 | 第21页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第21-23页 |
| 2.实验方法 | 第23-28页 |
| 2.1 质粒转染实验 | 第23-25页 |
| 2.2 RT-PCR 实验 | 第25页 |
| 2.3 Western blot 实验 | 第25-26页 |
| 2.4 免疫组化实验 | 第26页 |
| 2.5 MTT 实验 | 第26-27页 |
| 2.6 平板克隆形成实验 | 第27页 |
| 2.7 细胞伤口愈合实验 | 第27页 |
| 2.8 Boyden 小室实验 | 第27-28页 |
| 2.9 数据处理 | 第28页 |
| （四） 结果 | 第28-37页 |
| 1.FOXC2 在 GBM 病人及对照人脑组织中的表达 | 第28-29页 |
| 2.FOXC2 在六种 GBM 细胞系中的表达 | 第29-30页 |
| 3.FOXC2 过表达与基因沉默细胞模型构建 | 第30页 |
| 4.FOXC2 对 GBM 细胞增殖活性的影响 | 第30-32页 |
| 5.FOXC2 对 GBM 细胞迁移和侵袭活性的影响 | 第32-33页 |
| 6.FOXM2 对 EGFR 的调控作用 | 第33-34页 |
| 7.EGFR 调节 FOXM2 在 GBM 细胞内功能的发挥 | 第34-37页 |
| （五） 讨论 | 第37-38页 |
| （六） 结论 | 第38-39页 |
| 第二部分 MUC4粘蛋白上调表皮生长因子受体表达及其对多型性胶质母细胞瘤增殖、迁移与侵袭促进作用研究 | 第39-59页 |
| （二） 引言 | 第39-40页 |
| （三） 材料和方法 | 第40-48页 |
| 1.材料 | 第40-44页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第40页 |
| 1.2 仪器 | 第40-41页 |
| 1.3 人体组织和细胞 | 第41页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第41-44页 |
| 2.实验方法 | 第44-48页 |
| 2.1 质粒转染实验 | 第44-45页 |
| 2.2 RT-PCR 实验 | 第45页 |
| 2.3 Western blot 实验 | 第45-46页 |
| 2.4 免疫组化实验 | 第46-47页 |
| 2.5 MTT 实验 | 第47页 |
| 2.6 平板克隆形成实验 | 第47页 |
| 2.7 细胞伤口愈合实验 | 第47-48页 |
| 2.8 Boyden 小室模型实验 | 第48页 |
| 2.9 数据处理 | 第48页 |
| （四） 结果 | 第48-57页 |
| 1.MUC4 在 GBM 病人脑组织中表达高于对照人脑组织 | 第48-49页 |
| 2.MUC4 在六种 GBM 细胞系中的表达 | 第49-50页 |
| 3.MUC4 过表达与基因沉默细胞模型构建 | 第50-51页 |
| 4.MUC4 对 GBM 细胞增殖活性的影响 | 第51-52页 |
| 5.MUC4 对 GBM 细胞迁移和侵袭活性的影响 | 第52-53页 |
| 6.MUC4 对于 EGFR 表达的调节作用 | 第53-54页 |
| 7.EGFR 调节 MUC4 诱导的 GBM 细胞增殖和侵袭活性 | 第54-57页 |
| （五） 讨论 | 第57-58页 |
| （六） 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 综述 | 第67-76页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 本研究的论文发表、获奖和参加学会情况 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
