| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 英文缩略词对照表 | 第8-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 实验研究 | 第13-51页 |
| 1 材料 | 第13-16页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 动物饲养环境 | 第13-14页 |
| 1.3 实验药物 | 第14页 |
| 1.3.1 实验组药物 | 第14页 |
| 1.3.2 对照组药物 | 第14页 |
| 1.4 实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.5 实验仪器和设备 | 第15-16页 |
| 2 方法 | 第16-22页 |
| 2.1 实验设计及分组 | 第16-17页 |
| 2.2 AM动物模型的建立 | 第17页 |
| 2.3 观察动情周期 | 第17-18页 |
| 2.4 标本采集与处理 | 第18页 |
| 2.5 检测技术与方法 | 第18-21页 |
| 2.5.1 组织形态学观察及评分方法 | 第18-20页 |
| 2.5.2 各指标的免疫组化检测及观察 | 第20-21页 |
| 2.6 统计学分析 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-30页 |
| 3.1 组织形态学观察及评分 | 第22-24页 |
| 3.1.1 手术操作及病程发展对AM评分的影响 | 第22-23页 |
| 3.1.2 不同药物对AM评分的影响 | 第23-24页 |
| 3.2 雌激素代谢相关因子的变化 | 第24-30页 |
| 3.2.1 PTEN的表达差异 | 第24-26页 |
| 3.2.2 p-p65的表达差异 | 第26-29页 |
| 3.2.3 雌激素效应相关因子随动情周期变化的表达差异 | 第29-30页 |
| 3.2.4 雌激素效应相关因子在位与异位的表达差异 | 第30页 |
| 4 讨论 | 第30-47页 |
| 4.1 造模 | 第30-32页 |
| 4.1.1 异体垂体移植造模法的选择 | 第30-31页 |
| 4.1.2 造模方法的改良 | 第31-32页 |
| 4.2 中医治疗AM现状 | 第32页 |
| 4.3 清湿化瘀法 | 第32-34页 |
| 4.3.1 清湿化瘀法的立法依据 | 第32-34页 |
| 4.3.2 清湿化瘀法对子宫腺肌病小鼠细胞凋亡机制的影响 | 第34页 |
| 4.4 实验药物的选择 | 第34-38页 |
| 4.4.1 内异康复片作为“清湿化瘀”的代表方 | 第34-37页 |
| 4.4.2 中药阳性对照药物 | 第37-38页 |
| 4.4.3 西药阳性对照药物 | 第38页 |
| 4.5 观察指标的选择 | 第38-43页 |
| 4.5.1 PTEN的生物学特性 | 第38-39页 |
| 4.5.2 PTEN的生物学行为 | 第39-40页 |
| 4.5.3 PTEN在子宫腺肌病异位病灶中的表达及意义 | 第40-41页 |
| 4.5.4 P-P65的生物学特性 | 第41-42页 |
| 4.5.5 P-P65的生物学行为 | 第42页 |
| 4.5.6 P-P65在子宫腺肌病异位病灶中的表达及意义 | 第42-43页 |
| 4.6 PTEN、NF-κBP65及PI3K/Akt与AM发病的相关性及其作用机理 | 第43-44页 |
| 4.7 实验结果的讨论 | 第44-47页 |
| 4.7.1 AM小鼠模型建立的成功率 | 第44-45页 |
| 4.7.2 观察指标在AM小鼠模型形成过程中的机制研究 | 第45页 |
| 4.7.3 不同药物治疗AM的疗效比较 | 第45-46页 |
| 4.7.4 PTEN、p-p65随时间变化的表达差异 | 第46-47页 |
| 4.7.5 PTEN、p-p65随空间变化的表达差异 | 第47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 6 主要工作与创新 | 第48-49页 |
| 6.1 主要工作 | 第48-49页 |
| 6.2 创新 | 第49页 |
| 7 问题与展望 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 附录一：综述 | 第58-64页 |
| 参考文献 | 第62-64页 |
| 附录二：图片 | 第64-65页 |
| 附录三：在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第65-66页 |
