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去乙酰化酶SIRT2及Septin4在心脏血管损伤疾病的作用及其机制研究

摘要第4-8页
Abstract第8-12页
英文缩略语第13-17页
第一部分 :去乙酰化酶SIRT2抑制血管紧张素2诱导的心肌损伤第17-44页
    1 前言第17-19页
    2 材料与方法第19-29页
        2.1 主要试剂和仪器第19-21页
            2.1.1 主要试剂第19-20页
            2.1.2 主要仪器第20-21页
            2.1.3 小鼠、细胞、质粒第21页
        2.2 实验方法第21-29页
            2.2.1 细胞培养第21-22页
            2.2.2 细胞AngⅡ药物干预第22页
            2.2.3 脂质体转染法转染第22页
            2.2.4 慢病毒感染第22-23页
            2.2.5 CCK8分析H9C2的细胞活力第23页
            2.2.6 小鼠高血压心肌损伤模型建立第23-24页
            2.2.7 小鼠血压测量第24页
            2.2.8 小鼠心脏超声分析第24页
            2.2.9 免疫组化Masson染色第24-25页
            2.2.10 蛋白提取第25-26页
            2.2.11 免疫印记第26-28页
            2.2.12 免疫共沉淀与质谱分析第28-29页
    3 结果第29-41页
        3.1 SIRT2对抗AngⅡ诱导的H9C2细胞损伤第29-32页
            3.1.1 AngⅡ诱导的H9C2损伤,增加SIRT2蛋白表达水平第29页
            3.1.2 大鼠心肌细胞shSIRT2片段2具有最高敲减效率第29-30页
            3.1.3 大鼠心肌细胞敲减SIRT2加重的AngⅡ诱导的心肌损伤第30-31页
            3.1.4 大鼠心肌细胞抑制SIRT2活性加重的AngⅡ诱导的心肌损伤第31-32页
        3.2 SIRT2敲除加重AngⅡ诱导的小鼠心肌损伤第32-39页
            3.2.1 SIRT2-KO对AngⅡ诱导的小鼠血压增加无明显作用第32-33页
            3.2.2 SIRT2-KO对AngⅡ诱导的小鼠心率变化无明显作用第33-34页
            3.2.3 SIRT2-KO加重AngⅡ诱导的小鼠心脏/体重比值增加第34-35页
            3.2.4 SIRT2-KO加重AngⅡ诱导的小鼠心脏功能损伤第35-36页
            3.2.5 SIRT2-KO加重AngⅡ诱导的小鼠心脏左室收缩和舒张功能第36-37页
            3.2.6 SIRT2-KO加重AngⅡ诱导的小鼠心肌纤维化第37-38页
            3.2.7 SIRT2-KO加重AngⅡ诱导的小鼠心脏损伤凋亡和纤维化蛋白指标的表达第38-39页
        3.3 质谱分析与SIRT2相互作用的蛋白第39-41页
    4 讨论第41-43页
    5 结论第43-44页
第二部分 :Septin4特异性结合PARP1参与氧化应激诱导的血管内皮细胞损伤第44-72页
    1 前言第44-46页
    2 材料与方法第46-57页
        2.1 主要试剂和仪器第46-48页
            2.1.1 主要试剂第46-47页
            2.1.2 主要仪器第47-48页
            2.1.3 小鼠、细胞、质粒第48页
        2.2 实验方法第48-57页
            2.2.1 细胞培养与干预第48页
            2.2.2 蛋白提取第48-49页
            2.2.3 免疫印记第49-51页
            2.2.4 免疫共沉淀第51页
            2.2.5 凋亡流式细胞技术第51页
            2.2.6 脂质体转染法转染第51-52页
            2.2.7 siRNA干扰第52页
            2.2.8 重组质粒的构建第52-55页
            2.2.9 ROS检测第55页
            2.2.10 细胞存活实验第55-57页
    3 结果第57-69页
        3.1 H_2O_2增加Septin4和凋亡通路相关基因的表达,降低细胞活力第57-58页
            3.1.1 随H_2O_2处理浓度增加,HUVEC细胞活性逐渐降低第57页
            3.1.2 H_2O_2显著增加Septin4以及凋亡通路相关基因cleavedcaspase-3和cleavedPARP1表达第57-58页
        3.2 敲减Septin4抑制H_2O_2诱导的HUVEC损伤第58-62页
            3.2.1 HUVEC中Septin4siRNA片段3具有最高敲减效率第58-59页
            3.2.2 HUVEC中敲减Septin4明显缓解H_2O_2诱导的细胞毒性第59页
            3.2.3 敲减Septin4明显缓解H_2O_2诱导的HUVEC凋亡第59-60页
            3.2.4 敲减Septin4明显缓解H_2O_2诱导的HUVEC凋亡相关蛋白cleavedcaspase-3和cleavedPARP1表达第60-61页
            3.2.5 HUVEC中敲减Septin4明显缓解H_2O_2诱导的ROS产生第61-62页
        3.3 HUVEC过表达Septin4加重H_2O_2诱导的HUVEC损伤第62-66页
            3.3.1 HUVEC中过表达Septin4明显加重H_2O_2诱导的细胞毒性第62-63页
            3.3.2 过表达Flag-Septin4明显加重H_2O_2诱导的HUVEC凋亡第63-64页
            3.3.3 过表达Flag-Septin4明显加重H_2O_2诱导的HUVEC凋亡相关蛋白cleavedcaspase-3和cleavedPARP1表达第64-65页
            3.3.4 HUVEC中过表达Septin4明显加重H_2O_2诱导的ROS产生第65-66页
        3.4 HUVEC中Septin4与凋亡相关因子PARP1相互作用第66-69页
            3.4.1 內源免疫共沉淀证实Septin4与PARP1相互作用第66-67页
            3.4.2 內源免疫共沉淀实验证明,在H_2O_2刺激下,Septin4与PARP1结合水平增强第67-69页
    4 讨论第69-71页
    5 结论第71-72页
本研究创新性自我评价第72-73页
参考文献第73-78页
综述一第78-88页
    参考文献第83-88页
综述二第88-98页
    参考文献第94-98页
攻读学位期间取得的研究成果第98-99页
致谢第99-100页
个人简介第100页

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