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红梨着色机理的研究

摘要第1-13页
Abstract第13-16页
1 前言第16-33页
   ·植物花青苷研究第16-28页
     ·植物花青苷结构及种类第16-17页
     ·花青苷的理化性质第17页
     ·花青苷的作用第17-18页
     ·花青苷的生物合成第18-25页
       ·花青苷合成结构基因第19-23页
       ·调控花色素苷合成的转录因子第23-25页
     ·影响花色素苷合成的环境因素第25-28页
       ·光照的影响第25-26页
       ·温度的影响第26-27页
       ·激素的影响第27页
       ·花青苷合成相关蛋白的鉴定第27-28页
   ·红梨花青苷研究进展第28-30页
     ·红梨资源研究第28页
     ·红梨花青苷分布及成分研究第28-29页
     ·红梨花青苷合成基因研究第29-30页
     ·红梨花青苷合成酶活性及环境与红梨花青苷合成关系研究第30页
   ·本研究的内容及目标第30-33页
2 材料与方法第33-52页
   ·试材与套袋试验第33-34页
     ·材料第33页
     ·试验处理第33页
     ·菌株及载体第33页
     ·主要药品试剂、酶、试剂盒及仪器第33-34页
     ·PCR 引物合成与测序第34页
   ·方法第34-52页
     ·果皮中花青苷成分和含量测定第34-35页
       ·果皮中花青苷含量测定第34页
       ·果皮中花青苷成分测定第34-35页
     ·果皮PAL、CHI 活性测定第35页
     ·植物基因组DNA 提取与纯化第35-36页
       ·植物基因组DNA 提取第35-36页
       ·植物基因组DNA 纯化第36页
       ·植物基因组质量检测第36页
     ·植物材料总RNA 的提取第36-37页
       ·植物总RNA 提取采用CTAB 法第36-37页
       ·植物RNA 质量检测第37页
     ·cDNA 第一条链的合成第37-39页
       ·普通PCR 反转录cDNA 第一条链的合成第37-38页
       ·RACE-PCR cDNA 第一链合成第38-39页
     ·cDNA 末端的快速扩增(RACE)第39-41页
     ·PyMY810 cDNA 全长序列的获得第41页
     ·DNA 片段与克隆载体的连接第41页
     ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化第41-42页
       ·大肠杆菌感受态细胞的制备第41-42页
     ·质粒DNA 的酶切鉴定第42-43页
     ·目的片段的回收第43页
     ·根癌农杆菌GV3101 感受态细胞的制备与转化第43-44页
       ·农杆菌感受态细胞的制备第43-44页
       ·电转法转化农杆菌第44页
     ·DNA 序列测定第44页
     ·PyMY810 基因正义表达载体的构建第44-45页
     ·拟南芥的栽培、转化及转基因植株分析第45-47页
       ·拟南芥幼苗的萌发与移栽第45-46页
       ·拟南芥的转化第46页
       ·转基因植株的分析第46-47页
     ·实时定量RT-PCR(Real Time quantitative Reverse Transcription PCR)第47页
     ·PyMY810 基因原核表达载体的构建﹑鉴定及在大肠杆菌中的表达第47-48页
     ·样品处理第48页
       ·蛋白质的提取第48页
       ·蛋白质的定量第48页
     ·双向电泳第48-49页
       ·加样品水化第48页
       ·第一向等电聚焦(IEF)第48页
       ·IPG 胶条的平衡第48-49页
       ·第二向SDS-PAGE 电泳第49页
       ·染色第49页
       ·软件分析第49页
     ·胶内酶解方法第49-52页
       ·操作步骤第49-50页
     ·质谱分析第50-52页
       ·质谱检测条件第50-51页
       ·质谱搜库条件和参数第51-52页
3 结果与分析第52-72页
   ·红色砂梨着色过程中果皮花青苷含量变化第52页
   ·红色砂梨着色过程中果皮PAL 和CHI 酶活性变化第52-53页
   ·套袋对奥冠果皮花青苷含量影响第53-54页
   ·套袋对奥冠果皮PAL 和CHI 酶活性影响第54页
   ·红梨果皮中DNA 和RNA 提取第54-55页
   ·红色砂梨果皮 PyMYB10 克隆与序列分析第55-59页
     ·PyMYB10 中间片段获得第55页
     ·PyMYB10 基因 3’片段的分离第55-56页
     ·PyMYB10 基因 5’片段的分离第56页
     ·PyMYB10 基因全长 cDNA 的分离第56页
     ·‘奥冠’PyMYB10 基因的序列分析第56-57页
     ·PyMYB10 进化树分析第57-58页
     ·PyMYB10 基因组序列克隆及分析第58-59页
     ·PyMYB10 基因组上游调控序列克隆与序列分析第59页
   ·PyMYB10 基因表达分析第59-63页
     ·光照对‘奥冠’红梨花青苷合成及 PyMYB10 基因表达的影响第59-60页
     ·PyMYB10 基因在‘奥冠’红梨各器官中的表达测定第60-61页
     ·着色期红色砂梨花青苷合成基因表达量及花青苷含量测定第61-63页
   ·转基因拟南芥正义表达载体 pBI121-PyMYB10 的构建第63页
   ·转基因植株的鉴定第63-64页
   ·转基因植株的表型分析第64页
   ·原核表达质粒的构建与SDS-PAGE 分析第64-65页
   ·套袋‘红蓓蕾莎’与对照果皮花青苷含量与组分比较分析第65-67页
   ·套袋‘红蓓蕾莎’与对照果皮蛋白质组学比较分析第67-72页
4 讨论第72-80页
   ·红梨花青苷合成与相关酶活性关系第72-74页
   ·红梨PyMY810 调控花青苷合成第74-76页
   ·PyMY810 原核表达分析第76页
   ·套袋对红梨花青苷合成及功能蛋白表达的影响第76-80页
5 结论第80-81页
本文创新点第81-82页
附录第82-87页
参考文献第87-104页
致谢第104-105页
攻读学位期间发表论文第105-106页
博士学位论文内容简介及自评学第106页

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