| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一部分 绪论 | 第11-29页 |
| 1. 阿拉伯半乳糖蛋白AGPs | 第11-18页 |
| 1.1 AGPs的分子结构与分类 | 第11-15页 |
| 1.2 AGPs的生理生化特性及研究方法 | 第15-17页 |
| 1.3 AGPs的生物学功能 | 第17-18页 |
| 2. RNA干扰 | 第18-23页 |
| 2.1 RNA干扰的历史研究背景 | 第19页 |
| 2.2 RNA干扰的作用机制 | 第19-22页 |
| 2.3 RNA干扰的作用特点 | 第22-23页 |
| 3. 油菜遗传转化的受体系统 | 第23-24页 |
| 3.1 下胚轴及子叶转化体系 | 第23页 |
| 3.2 原生质体转化体系 | 第23-24页 |
| 3.3 小孢子、花药、花粉胚转化体系 | 第24页 |
| 3.4 叶绿体转化体系 | 第24页 |
| 4. 植物遗传转化的方法 | 第24-28页 |
| 4.1 农杆菌介导法 | 第25-26页 |
| 4.2 基因枪法 | 第26页 |
| 4.3 PEG介导法 | 第26-27页 |
| 4.4 油菜再生和遗传转化过程中遇到的问题及解决方法 | 第27-28页 |
| 5. 本实验的目的及意义 | 第28-29页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第29-39页 |
| 1. 试验材料 | 第29-32页 |
| 1.1 植物材料 | 第29页 |
| 1.2 实验用菌株 | 第29页 |
| 1.3 干扰表达载体 | 第29页 |
| 1.4 酶与试剂、仪器和设备 | 第29-30页 |
| 1.5 主要溶液及配制 | 第30-31页 |
| 1.6 培养基 | 第31-32页 |
| 2. 实验方法 | 第32-39页 |
| 2.1 RNA干扰载体的构建 | 第32-33页 |
| 2.2 大肠杆菌感受态的制备及其转化方法 | 第33-34页 |
| 2.3 质粒DNA的抽提 | 第34页 |
| 2.4 胶回收试剂盒回收DNA | 第34-35页 |
| 2.5 T载体的连接 | 第35页 |
| 2.6 农杆菌感受态的制备及其转化方法 | 第35-36页 |
| 2.7 油菜子叶柄的遗传转化 | 第36-37页 |
| 2.8 油菜叶片总DNA的提取 | 第37页 |
| 2.9 转基因植株的PCR检测 | 第37-38页 |
| 2.10 拟南芥的种植及根的染色观察 | 第38-39页 |
| 第三部分 实验结果与分析 | 第39-50页 |
| 1. RNA干扰载体的构建 | 第39-40页 |
| 2. 农杆菌的转化 | 第40-41页 |
| 3. 油菜的遗传转化、生根和移栽 | 第41-42页 |
| 4. βG1cY对拟南芥根的生长发育形态的影响 | 第42-45页 |
| 5. βG1cY对生长与运输载体蛋白分布的影响 | 第45-48页 |
| 5.1 βG1cY对PIN1分布的影响 | 第45-46页 |
| 5.2 βG1cY对DR5分布的影响 | 第46-48页 |
| 6. βG1cY对PIN2极性分布的影响 | 第48-50页 |
| 第四部分 讨论 | 第50-52页 |
| 1. RNAi在植物发育研究中的应用 | 第50-51页 |
| 2. 细胞壁与生长素极性定位的关系 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-63页 |
| 致谢 | 第63页 |