| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略词表 | 第10-17页 |
| 1. 绪论 | 第17-28页 |
| 1.1 保卫细胞运动的调控机制 | 第17-22页 |
| 1.1.1 环境因素对保卫细胞运动的影响 | 第17-19页 |
| 1.1.2 植物激素对保卫细胞运动的调控作用 | 第19-21页 |
| 1.1.3 ROS、NO、Ca~(2+)等信号对保卫细胞运动的调控作用 | 第21-22页 |
| 1.2 油菜素甾醇调节保卫细胞运动研究进展 | 第22-25页 |
| 1.2.1 油菜素甾醇信号转导途径 | 第23-24页 |
| 1.2.2 油菜素甾醇与其他植物激素的互作 | 第24页 |
| 1.2.3 油菜素甾醇对保卫细胞运动的调控 | 第24-25页 |
| 1.3 蛋白组学在保卫细胞运动中的应用 | 第25-26页 |
| 1.4 立题依据与研究目标 | 第26-28页 |
| 2. 油菜素甾醇对番茄保卫细胞运动的影响 | 第28-36页 |
| 2.1 材料与方法 | 第28-31页 |
| 2.1.1 实验材料与种植 | 第28-29页 |
| 2.1.2 保卫细胞运动的观察 | 第29页 |
| 2.1.3 气孔孔径的测量与统计 | 第29-30页 |
| 2.1.4 保卫细胞内活性氧的监测 | 第30页 |
| 2.1.5 保卫细胞内活性氧的清除 | 第30-31页 |
| 2.2 结果与分析 | 第31-35页 |
| 2.2.1 EBR诱导番茄气孔的关闭 | 第31-32页 |
| 2.2.2 BZR1-1D诱导番茄气孔的关闭 | 第32页 |
| 2.2.3 保卫细胞内活性氧的监测 | 第32-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-36页 |
| 3. 番茄保卫细胞iTRAQ蛋白组学研究 | 第36-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-44页 |
| 3.1.1 实验材料与种植 | 第37-38页 |
| 3.1.2 保卫细胞的分离、纯化与活性检测 | 第38-39页 |
| 3.1.3 蛋白质提取 | 第39页 |
| 3.1.4 蛋白质浓度检测 | 第39-40页 |
| 3.1.5 蛋白质变性、还原和半胱氨酸阻断 | 第40页 |
| 3.1.6 胰蛋白酶酶解蛋白质 | 第40页 |
| 3.1.7 iTRAQ试剂标记消化蛋白 | 第40-41页 |
| 3.1.8 强阳离子交换(SCX) | 第41页 |
| 3.1.9 质谱分析 | 第41-42页 |
| 3.1.10 数据分析 | 第42页 |
| 3.1.11 RNA的提取 | 第42-43页 |
| 3.1.12 实时荧光定量PCR检测 | 第43-44页 |
| 3.2 结果与分析 | 第44-64页 |
| 3.2.1 鉴定信息统计 | 第44页 |
| 3.2.2 EBR外源处理组保卫细胞蛋白组学分析 | 第44-51页 |
| 3.2.3 BZR1-1D过表达转基因组保卫细胞蛋白组学分析 | 第51-57页 |
| 3.2.4 响应蛋白转录水平验证 | 第57-59页 |
| 3.2.5 EBR响应蛋白与油菜保卫细胞中的ABA、MeJA响应蛋白对比 | 第59页 |
| 3.2.6 响应蛋白在保卫细胞运动过程中的功能分析 | 第59-64页 |
| 3.3 讨论 | 第64-66页 |
| 4. BR通过诱导ABA与JA的合成调节番茄保卫细胞运动 | 第66-76页 |
| 4.1 材料与方法 | 第66-69页 |
| 4.1.1 实验材料与种植 | 第66-67页 |
| 4.1.2 保卫细胞运动的观察 | 第67页 |
| 4.1.3 气孔孔径的测量与统计 | 第67页 |
| 4.1.4 番茄叶片激素处理 | 第67-68页 |
| 4.1.5 RNA的提取 | 第68页 |
| 4.1.6 实时荧光定量PCR检测 | 第68-69页 |
| 4.1.7 数据分析 | 第69页 |
| 4.2 结果与分析 | 第69-74页 |
| 4.2.1 EBR诱导的气孔关闭过程与ABA生物合成和JA信号有关 | 第69-72页 |
| 4.2.2 BZR1诱导了ABA,JA,ROS相关基因转录水平的表达 | 第72-74页 |
| 4.3 讨论 | 第74-76页 |
| 5. 结论,创新点与展望 | 第76-79页 |
| 5.1 结论 | 第76-77页 |
| 5.2 创新点 | 第77页 |
| 5.3 展望 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-93页 |
| 作者简介 | 第93页 |
