| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 文献回顾 | 第17-36页 |
| 第一部分 骨髓间充质干细胞对小鼠盲肠结扎穿孔致脓毒症的治疗作用 | 第36-58页 |
| 1 材料 | 第36-38页 |
| 2 方法 | 第38-45页 |
| 2.1 BMSCs的原代分离、培养、鉴定 | 第38-39页 |
| 2.2 成纤维细胞的分离、培养 | 第39-40页 |
| 2.3 脓毒症小鼠模型的建立及实验分组 | 第40-42页 |
| 2.4 观察BMSCs在体内的分布 | 第42页 |
| 2.5 小鼠生存率观察 | 第42页 |
| 2.6 左室收缩功能测定 | 第42页 |
| 2.7 心脏血流动力学检测 | 第42页 |
| 2.8 酶联免疫吸附法（ELISA）检测小鼠血清脏器损伤指标及炎症因子水平 | 第42-43页 |
| 2.9 苏木精-伊红（HE）染色法观察小鼠脏器组织病理变化 | 第43页 |
| 2.10免疫组织化学染色（SP法）观察小鼠脏器炎性细胞浸润 | 第43-44页 |
| 2.11免疫荧光染色观察小鼠脏器炎性细胞浸润 | 第44页 |
| 2.12 Western Blot检测肝脏组织的蛋白水平 | 第44-45页 |
| 2.13统计学分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-54页 |
| 3.1 BMSCs的生物学特征 | 第45-46页 |
| 3.2 BMSCs辅助治疗改善脓毒症小鼠的一般状况 | 第46-47页 |
| 3.3 尾静脉注射BMSCs在脓毒症小鼠重要脏器的定植情况 | 第47页 |
| 3.4 BMSCs辅助治疗提高脓毒症小鼠生存率 | 第47-48页 |
| 3.5 BMSCs辅助治疗减轻脓毒症所致重要脏器的病理损伤 | 第48页 |
| 3.6 BMSCs辅助治疗改善脓毒症所致重要脏器的功能 | 第48-50页 |
| 3.7 BMSCs辅助治疗改善脓毒症所致心脏功能下降 | 第50-51页 |
| 3.8 BMSCs辅助治疗减轻脓毒症所致重要脏器炎性细胞浸润 | 第51-52页 |
| 3.9 BMSCs辅助治疗调节脓毒症血清炎症因子水平 | 第52-53页 |
| 3.10 BMSC e GFP+辅助治疗脓毒症与抑制炎症复合体3的激活有关 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| 小结 | 第57-58页 |
| 第二部分 骨髓间充质干细胞对骨髓来源巨噬细胞调节作用的机制研究 | 第58-74页 |
| 1 材料 | 第58-59页 |
| 2 方法 | 第59-63页 |
| 2.1 BMSCs的原代分离、培养、鉴定 | 第59页 |
| 2.2 BMDMs的原代分离、培养、鉴定 | 第59-60页 |
| 2.3 细胞培养分组及干预 | 第60页 |
| 2.4 酶联免疫吸附法(ELISA)检测细胞培养上清炎症因子水平 | 第60-61页 |
| 2.5 流式细胞术检测BMDMs线粒体ROS生成 | 第61页 |
| 2.6 免疫荧光染色观察BMDMs的NLRP3 和LC3B亚细胞定位 | 第61-62页 |
| 2.7 透射电子显微镜观察BMDMs线粒体形态 | 第62页 |
| 2.8 Western Blot检测BMDMs的蛋白水平 | 第62页 |
| 2.9 统计学分析 | 第62-63页 |
| 3 结果 | 第63-71页 |
| 3.1 BMDMs的生物学特征 | 第63页 |
| 3.2 BMSCs对BMDMs的调节作用与炎症复合体3激活有关 | 第63-65页 |
| 3.3 BMSCs减少LPS和ATP干预后BMDMs线粒体的损伤和ROS产生 | 第65页 |
| 3.4 BMSCs改变LPS和ATP干预后NLRP3 在BMDMs中的分布 | 第65-66页 |
| 3.5 BMSCs通过减少LPS和ATP干预后BMDMs线粒体的损伤和ROS产生,抑制炎症复合体3的激活 | 第66-67页 |
| 3.6 BMSCs增加LPS和ATP干预后BMDMs的线粒体自噬 | 第67-68页 |
| 3.7 BMSCs通过增加LPS和ATP干预后BMDMs的线粒体自噬,抑制炎症复合体3的激活 | 第68-69页 |
| 3.8 BMSCs通过PINK1/Parkin途径增加LPS和ATP干预后BMDMs的线粒体自噬,减少线粒体ROS的生成 | 第69-71页 |
| 4 讨论 | 第71-72页 |
| 小结 | 第72-74页 |
| 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-91页 |
| 个人简历和研究成果 | 第91-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
