缩写词及中英文对照 | 第4-7页 |
中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
1 前言 | 第11-22页 |
1.1 玉米的叶片结构 | 第11-13页 |
1.1.1 玉米叶片的细胞增殖 | 第12页 |
1.1.2 玉米叶片的延伸生长 | 第12-13页 |
1.2 玉米叶片的生长模式 | 第13-14页 |
1.2.1 近远端轴向生长模式 | 第13页 |
1.2.2 中间外侧轴向的生长模式 | 第13-14页 |
1.2.3 近轴远轴的生长模式 | 第14页 |
1.3 叶夹角的研究进展 | 第14-18页 |
1.3.1 植物激素对叶片发育和叶夹角的影响 | 第14-16页 |
1.3.2 组织或者细胞结构对玉米叶片及叶夹角的影响 | 第16页 |
1.3.3 轴向模式影响叶片的发育和叶夹角 | 第16-18页 |
1.4 转录组测序 | 第18-21页 |
1.4.1 转录组测序在玉米研究中的应用 | 第19页 |
1.4.2. 转录组测序的优点 | 第19页 |
1.4.3 转录组测序的研究方法 | 第19-21页 |
1.4.3.1 样本的获得 | 第19-20页 |
1.4.3.2 转录组测序结果检测 | 第20页 |
1.4.3.3 转录组测序结果的分析 | 第20-21页 |
1.5 本研究的意义 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-29页 |
2.1 试验材料 | 第22页 |
2.2 试验方法 | 第22-29页 |
2.2.1 材料种植与性状调查 | 第22-23页 |
2.2.1.1 材料田间种植 | 第22-23页 |
2.2.1.2 实验材料玉米自交系的性状调查 | 第23页 |
2.2.2 扫描电子显微镜材料处理 | 第23页 |
2.2.3 玉米RNA的提取、纯化和检测 | 第23-24页 |
2.2.4 cDNA文库的构建和测序 | 第24-25页 |
2.2.5 差异表达基因的分析与生物学重复性检测 | 第25页 |
2.2.6 试验中的相关试剂的配制 | 第25-26页 |
2.2.7 反转录合成cDNA | 第26-27页 |
2.2.7.1 DNA酶处理 | 第26页 |
2.2.7.2 反转录 | 第26-27页 |
2.2.8 qRT-PCR检测实验数据 | 第27-29页 |
2.2.8.1 反应体系和扩增程序 | 第27页 |
2.2.8.2 qRT-PCR的引物设计 | 第27-28页 |
2.2.8.3 荧光定量PCR产物的琼脂糖凝胶电泳的检测 | 第28-29页 |
3 结果与分析 | 第29-51页 |
3.1 表型性状的统计与分析 | 第29-31页 |
3.1.1 统计材料植株表型 | 第29-30页 |
3.1.2 统计结果与分析 | 第30-31页 |
3.2 B73和98扫描电子显微镜图像分析 | 第31-33页 |
3.3 转录组测序结果的生物学重复性检测 | 第33-36页 |
3.4 不同时期发育时期基因表达数目统计 | 第36-37页 |
3.5 玉米叶耳发育不同阶段的差异表达基因统计 | 第37-39页 |
3.6 不同信号转导途径表达基因数目统计 | 第39页 |
3.7 B73和986不同发育时期差异表达基因热图分析 | 第39-44页 |
3.8 叶耳发育中期B73和986差异表达基因分析 | 第44-47页 |
3.9 qRT-PCR高通量结果的验证 | 第47-49页 |
3.10 叶夹角相关基因 | 第49-51页 |
4 讨论 | 第51-53页 |
5 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-59页 |
致谢 | 第59页 |