摘要 | 第3-14页 |
ABSTRACT | 第14-25页 |
前言 | 第29-35页 |
第一章 PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞株VEGF mRNA表达的影响 | 第35-43页 |
1. 材料 | 第36-37页 |
1.1 实验动物和材料 | 第36页 |
1.2 实验仪器 | 第36页 |
1.3 实验药品和试剂 | 第36-37页 |
2. 方法 | 第37-40页 |
2.1 细胞培养 | 第37页 |
2.2 荧光定量PCR | 第37-40页 |
2.3 统计分析 | 第40页 |
3. 结果 | 第40-41页 |
3.1 不同浓度PGE2处理下NR8383大鼠巨噬细胞内VEGF mRNA的表达水平 | 第40-41页 |
4. 讨论 | 第41-43页 |
第二章 PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞株促进HUVECs迁移能力的影响 | 第43-50页 |
1. 材料 | 第43-44页 |
1.1 细胞来源 | 第43页 |
1.2 实验仪器 | 第43-44页 |
1.3 实验药品和试剂 | 第44页 |
2. 方法 | 第44-46页 |
2.1 细胞培养 | 第44-45页 |
2.2 Transwell小室细胞迁移实验 | 第45-46页 |
2.3 统计分析 | 第46页 |
3. 结果 | 第46-48页 |
3.1 PGE2可以增强NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs迁移的能力 | 第46-47页 |
3.2 NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs迁移的能力与PGE2处理的能力呈正相关性 | 第47-48页 |
4. 讨论 | 第48-50页 |
第三章 PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞株促进HUVECs成管能力的影响 | 第50-57页 |
1 | 第50-51页 |
1.1 细胞来源 | 第50页 |
1.2 实验仪器 | 第50-51页 |
1.3 实验药品和试剂 | 第51页 |
2. 方法 | 第51-53页 |
2.1 细胞培养 | 第51-52页 |
2.2 Matrigel基质胶细胞成管实验 | 第52-53页 |
2.3 统计分析 | 第53页 |
3. 结果 | 第53-55页 |
3.1 PGE2可以增强NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs成管的能力 | 第53-54页 |
3.2 PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs成管能力的效应与PGE2处理浓度呈正相关 | 第54-55页 |
4. 讨论 | 第55-57页 |
第四章 PGE2特异性受体拮抗剂可以抑制PGE2对巨噬细胞促进血管生成的效应 | 第57-71页 |
1. 材料 | 第58-60页 |
1.1 实验动物和材料 | 第58页 |
1.2 实验仪器 | 第58-60页 |
2. 方法 | 第60-65页 |
2.1 细胞培养 | 第60页 |
2.2 荧光定量PCR | 第60-63页 |
2.3 Transwell小室细胞迁移实验 | 第63-64页 |
2.4 Matrigel基质胶细胞成管实验 | 第64-65页 |
2.5 统计分析 | 第65页 |
3. 结果 | 第65-69页 |
3.1 PGE2特异性受体拮抗剂可以抑制PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞VEGFmRNA表达水平调节的效应 | 第65-66页 |
3.2 PGE2特异性受体拮抗剂可以抑制PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs趋化迁移的作用 | 第66-68页 |
3.3 PGE2特异性受体拮抗剂可以抑制PGE2对NR8383大鼠巨噬细胞促进HUVECs成管的作用 | 第68-69页 |
4. 讨论 | 第69-71页 |
全文小结 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-79页 |
主要中英文缩略词表 | 第79-80页 |
硕士研究生期间发表论文情况 | 第80-81页 |
致谢 | 第81-82页 |