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主要食药用菌降血脂作用及其机理研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
缩略语表第10-16页
第一章 绪论第16-36页
    1.1 高脂血症的危害及防治第16-17页
    1.2 具有降血脂作用的食药用菌第17-22页
    1.3 食药用菌降血脂的作用机理研究第22-30页
        1.3.1 胆固醇的代谢及其调控第22-29页
        1.3.2 甘油三脂的代谢及其调控第29-30页
    1.4 蛋白质组学及其在高脂血症中的应用第30-33页
    1.5 食药用菌降血脂研究中存在的问题和展望第33页
    1.6 本论文的目的意义与研究内容第33-36页
        1.6.1 目的意义第33-34页
        1.6.2 研究内容第34-35页
        1.6.3 研究路线第35-36页
第二章 食药用菌调控脂类代谢关键基因表达的降血脂作用研究第36-60页
    2.1 实验材料第37-38页
        2.1.1 实验原料第37页
        2.1.2 实验动物与饲料第37页
        2.1.3 实验试剂第37-38页
        2.1.4 实验仪器第38页
    2.2 实验方法第38-43页
        2.2.1 食药用菌超微粉的制备第38页
        2.2.2 高脂血症大鼠模型的诱导第38-39页
        2.2.3 实验动物分组和给药第39页
        2.2.4 实验动物的取材和血脂测定第39页
        2.2.5 荧光定量PCR评价食药用菌对脂类代谢关键酶mRNA表达的调控作用第39-41页
        2.2.6 酶联免疫评价食药用菌对脂类代谢关键酶表达量的调控作用第41-42页
        2.2.7 统计分析第42-43页
    2.3 结果第43-54页
        2.3.1 实验动物体重变化第43-44页
        2.3.2 食药用菌对实验大鼠血清TC、LDL-C和TG水平的影响第44-46页
        2.3.3 食药用菌对胆固醇代谢关键酶表达的影响第46-51页
        2.3.4 食药用菌对甘油三酯代谢关键酶表达的影响第51-54页
    2.4 讨论第54-59页
        2.4.1 食药用菌对高脂血症大鼠的降血脂作用第54页
        2.4.2 食药用菌对胆固醇代谢关键酶的作用第54-58页
        2.4.3 食药用菌对甘油三酯代谢关键酶的作用第58-59页
    2.5 本章小结第59-60页
第三章 灰树花降血脂的蛋白质组学研究第60-80页
    3.1 实验材料第61-65页
        3.1.1 实验原料第61页
        3.1.2 实验试剂第61-64页
        3.1.3 实验仪器第64-65页
    3.2 实验方法第65-69页
        3.2.1 大鼠肝脏蛋白质的提取制备及总蛋白的定量第65-66页
        3.2.2 双向电泳的实验流程第66-69页
    3.3 实验结果第69-76页
        3.3.1 2-DE图像分析结果第69页
        3.3.2 差异蛋白质点的质谱鉴定结果第69-76页
    3.4 讨论第76-79页
        3.4.1 参与胆固醇代谢第76页
        3.4.2 参与甘油三脂代谢第76-77页
        3.4.3 与动脉粥样硬化的关系第77-78页
        3.4.4 与氨基酸代谢的关系第78页
        3.4.5 与能量代谢的关系第78页
        3.4.6 与微丝组装的关系第78页
        3.4.7 与蛋白质降解的关系第78-79页
    3.5 本章小结第79-80页
第四章 食药用菌粗多糖对高脂血症大鼠的降血脂作用研究第80-94页
    4.1 实验材料第80-82页
        4.1.1 实验原料第80页
        4.1.2 实验动物与饲料第80页
        4.1.3 实验试剂第80-81页
        4.1.4 实验仪器第81-82页
    4.2 实验方法第82-85页
        4.2.1 食药用菌粗多糖的提取第82页
        4.2.2 食药用菌粗多糖浓度的测定第82-83页
        4.2.3 大鼠高脂血症模型的诱导和给药第83页
        4.2.4 实验动物的取材第83页
        4.2.5 血清中血脂的测定第83-84页
        4.2.6 免疫组化实验第84-85页
        4.2.7 统计分析第85页
    4.3 实验结果第85-91页
        4.3.1 实验动物体重变化第85-86页
        4.3.2 食药用菌粗多糖对实验大鼠血清TC和TG水平的影响第86-87页
        4.3.3 食药用菌粗多糖对大鼠肝脏SOD、Prdx-1蛋白表达量的影响第87-91页
    4.4 讨论第91-92页
        4.4.1 食药用菌粗多糖对高脂血症大鼠的降血脂作用第91页
        4.4.2 食药用菌粗多糖提高大鼠肝脏SOD、Prdx-1的蛋白表达量第91-92页
    4.5 本章小结第92-94页
第五章 灰树花多糖F2的降血脂作用及其机理研究第94-118页
    5.1 实验材料第94-96页
        5.1.1 实验原料第94页
        5.1.2 实验动物与饲料第94-95页
        5.1.3 实验试剂第95页
        5.1.4 实验仪器第95-96页
    5.2 实验方法第96-100页
        5.2.1 灰树花粗多糖的提取第96页
        5.2.2 灰树花多糖的分离纯化第96页
        5.2.3 灰树花多糖F2的组成第96-97页
        5.2.4 大鼠高脂血症模型的诱导和给药第97-98页
        5.2.5 实验动物的取材和血脂测定第98页
        5.2.6 大鼠肝脏RNA的提取和转录组测序第98-100页
        5.2.7 统计分析第100页
    5.3 实验结果第100-113页
        5.3.1 灰树花粗多糖经阴离子交换柱第100-101页
        5.3.2 灰树花多糖F2的组成第101-103页
        5.3.3 实验动物体重变化第103-104页
        5.3.4 灰树花多糖F2对实验大鼠血清中血脂含量的影响第104-105页
        5.3.5 实验大鼠肝脏的转录组测序第105-113页
    5.4 讨论第113-115页
        5.4.1 灰树花多糖F2的组成第113页
        5.4.2 灰树花多糖F2对高脂血症大鼠的降血脂作用第113页
        5.4.3 灰树花多糖F2对大鼠肝脏基因差异表达的影响第113-115页
    5.5 本章小结第115-118页
结论与展望第118-122页
参考文献第122-138页
攻读博士学位期间取得的研究成果第138-140页
致谢第140-141页
附件第141页

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