缩写词 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
1 前言 | 第13-19页 |
1.1 氮素和生长素对植物根生长发育的影响 | 第13-15页 |
1.1.1 氮素对植物根长的作用 | 第14页 |
1.1.2 生长素对植物根长的作用 | 第14-15页 |
1.1.3 铵态氮对植物根长的作用 | 第15页 |
1.2 磷素对植物的重要性 | 第15-19页 |
1.2.1 磷素的现态 | 第16页 |
1.2.2 低磷诱导植物根际酸化 | 第16页 |
1.2.3 蔗糖参与低磷胁迫应答 | 第16-17页 |
1.2.4 GS-GOGAT循环中的小分子探究 | 第17-18页 |
1.2.5 Fd-GOGAT通过GS-GOGAT循环参与低磷胁迫的探究 | 第18-19页 |
2 材料与方法 | 第19-29页 |
2.1 实验仪器 | 第19页 |
2.2 实验材料 | 第19-20页 |
2.2.1 实验用植物材料 | 第19-20页 |
2.2.2 实验用质粒载体材料 | 第20页 |
2.3 实验试剂与培养基的配制 | 第20-25页 |
2.3.1 实验用DNA序列与引物序列 | 第20-21页 |
2.3.2 常用溶液的配制 | 第21-22页 |
2.3.3 营养素培养基的配制和培养实验 | 第22-25页 |
2.4 实验方法 | 第25-29页 |
2.4.1 铵态氮梯度培养主根长度方法 | 第25页 |
2.4.2 基因表达量测定 | 第25-26页 |
2.4.3 GUS染色方法 | 第26页 |
2.4.4 永久GFP观察 | 第26-27页 |
2.4.5 根际酸化能力定量测定方法 | 第27页 |
2.4.6 含有溴甲酚紫指示剂的pH原位显色方法 | 第27页 |
2.4.7 有机酸含量的测定 | 第27-29页 |
3 实验结果 | 第29-55页 |
研究一: | 第29-43页 |
3.1 突变体sr883的表型分析以及根长生长的机制探究 | 第29-43页 |
3.1.1 sr883突变体主根明显短小 | 第29-30页 |
3.1.2 sr883突变体为单基因隐性突变体 | 第30-31页 |
3.1.3 碱基片段缺失造成sr883突变 | 第31-32页 |
3.1.4 sr883突变体因碱基片段缺失引起基因表达下调 | 第32-33页 |
3.1.5 sr883突变导致根细胞伸长和细胞分裂受抑 | 第33-34页 |
3.1.6 基因SR883在根和叶中都有表达 | 第34-35页 |
3.1.7 基因SR883表达于细胞质 | 第35-36页 |
3.1.8 缺铵缓解sr883突变体主根生长受抑作用 | 第36-37页 |
3.1.9 sr883突变体的主根生长对铵态氮敏感 | 第37-39页 |
3.1.10 缺铵促进SR883基因的表达 | 第39页 |
3.1.11 缺铵使拟南芥根部生长素的分布与含量发生变化 | 第39-43页 |
研究二: | 第43-55页 |
3.2 p444突变体参与低磷诱导的根际酸化反应探究 | 第43-55页 |
3.2.1 p444是低磷胁迫下根际酸化反应缺失的突变体 | 第43页 |
3.2.2 蔗糖可以部分恢复低磷诱导p444根际酸化缺失表型 | 第43-44页 |
3.2.3 蔗糖对p444根际酸化影响具有浓度依赖性 | 第44-45页 |
3.2.4 α-酮戊二酸对p444根际酸化的影响具有浓度相关性 | 第45-46页 |
3.2.5 谷氨酸对p444根际酸化的影响具有浓度相关性 | 第46-47页 |
3.2.6 谷氨酰胺可使野生型在低磷条件下表现出p444突变体的表型 | 第47-48页 |
3.2.7 谷氨酰胺专一性的在低磷诱导的根际酸化反应中具有主导作用 | 第48-50页 |
3.2.8 稼接实验表明p444根际酸化缺失受来自叶片的信号调控 | 第50-51页 |
3.2.9 p444基因突变导致谷氨酰胺含量增加 | 第51-52页 |
3.2.10 植物通过谷氨酰胺远程调控低磷应答反应 | 第52-55页 |
4 讨论 | 第55-59页 |
4.1 氮素与主根根长的关系 | 第55-56页 |
4.1.1 氮素与植物根系的关系 | 第55页 |
4.1.2 生长素与植物根系的关系 | 第55-56页 |
4.2 磷素与植物根际酸化之间的调控关系 | 第56-59页 |
4.2.1 谷氨酰胺与低磷胁迫下的根际酸化反应 | 第56-59页 |
5 结论 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
致谢 | 第69页 |