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大型真菌蛋白研究及应用

论文创新点第5-10页
中文摘要第10-12页
Abstract第12-14页
第一部分 药用真菌北虫草转录组和蛋白质组研究第15-104页
    第一章 文献综述第15-27页
        1.1 大型真菌基因组及转录组研究现状第15-21页
            1.1.1 大型真菌概况第15-16页
            1.1.2 大型真菌基因组研究概况第16-19页
            1.1.3 大型真菌转录组研究概况第19-21页
        1.2 大型真菌蛋白质组研究现状第21-22页
        1.3 大型真菌活性蛋白研究现状第22-24页
        1.4 北虫草研究现状第24-27页
            1.4.1 北虫草概况第24页
            1.4.2 北虫草的组学研究现状第24-25页
            1.4.3 北虫草活性物质研究现状第25-27页
    第二章 北虫草菌丝、子实体转录组分析第27-56页
        引言第27页
        2.1 实验材料试剂及溶液配方第27-28页
            2.1.1 样本准备第27页
            2.1.2 实验试剂及配方第27-28页
        2.2 实验方法第28-29页
            2.2.1 北虫草菌丝及子实体RNA提取第28页
            2.2.2 北虫草菌丝及子实体cDNA文库构建及测序第28-29页
        2.3 数据处理及分析方法第29-31页
            2.3.1 原始序列数据处理第29-30页
            2.3.2 序列比对第30页
            2.3.3 测序随机性分析第30页
            2.3.4 可变剪接以及新转录本分析第30页
            2.3.5 功能注释第30页
            2.3.6 差异表达分析第30-31页
            2.3.7 半定量PCR及定量PCR第31页
        2.4 实验结果第31-43页
            2.4.1 北虫草菌丝及子实体转录组分析流程第31-32页
            2.4.2 与北虫草基因组进行序列比对第32-34页
            2.4.3 可变剪接以及新转录本预测第34-35页
            2.4.4 差异表达基因分析第35-40页
            2.4.5 虫草素代谢途径分析第40-43页
        2.5 讨论第43-45页
            2.5.1 北虫草转录组的基础分析第43-44页
            2.5.2 北虫草转录组的深入分析第44-45页
        2.6 本章小结第45-56页
    第三章 北虫草菌丝、子实体蛋白质组分析第56-89页
        引言第56页
        3.1 实验试剂及溶液配方第56页
            3.1.1 实验试剂第56页
            3.1.2 溶液配方第56页
        3.2 实验方法第56-58页
            3.2.1 北虫草菌丝及子实体蛋白提取第56-57页
            3.2.2 SDS-PAGE及胶内酶解第57页
            3.2.3 质谱检测第57-58页
            3.2.4 蛋白数据分析第58页
        3.3 实验结果第58-65页
            3.3.1 蛋白质组分析流程第58-59页
            3.3.2 蛋白质组鉴定第59-60页
            3.3.3 差异蛋白组分析第60-65页
            3.3.4 值得关注的活性蛋白分析第65页
        3.4 讨论第65-66页
        3.5 本章小结第66-89页
    第四章 北虫草生物活性蛋白天然纯化及原核表达第89-104页
        引言第89页
        4.1 实验材料试剂及溶液配方第89-90页
            4.1.1 实验材料试剂第89页
            4.1.2 溶液配方第89-90页
        4.3 实验方法第90-96页
            4.3.1 北虫草菌丝及子实体RNA反转录第90-91页
            4.3.2 PCR引物及酶切位点第91页
            4.3.3 PCR反应体系及条件第91-92页
            4.3.4 PCR产物和质粒酶切第92-93页
            4.3.5 连接体系及条件第93页
            4.3.6 DH5α感受态细胞的制备第93页
            4.3.7 连接产物转化第93-94页
            4.3.8 鉴定阳性克隆及保种第94页
            4.3.9 转化至表达菌株第94页
            4.3.10 GST融合蛋白的原核表达纯化第94-95页
            4.3.11 北虫草蛋白的天然纯化第95页
            4.3.12 蛋白血凝试验方法第95页
            4.3.13 抑制肿瘤细胞增殖实验第95页
            4.3.14 小鼠淋巴细胞分离第95-96页
            4.3.15 小鼠淋巴细胞增殖实验第96页
        4.4 实验结果第96-102页
            4.4.1 进行克隆及原核表达的基因信息第96-97页
            4.4.2 蛋白原核表达后纯化的结果第97页
            4.4.3 凝集素蛋白凝血活性检测第97-98页
            4.4.4 原核表达蛋白的抑制肿瘤细胞生长作用第98-100页
            4.4.5 原核表达蛋白体外刺激小鼠脾脏淋巴细胞增殖第100页
            4.4.6 北虫草蛋白的天然纯化第100-102页
            4.4.7 天然纯化蛋白的鉴定以及活性研究第102页
        4.5 讨论第102-103页
            4.5.1 克隆及原核表达基因的选择及研究第102-103页
            4.5.2 北虫草天然纯化蛋白的研究第103页
        4.6 本章小结第103-104页
第二部分 凝集素AAL-2用于富集O-GlcNAc修饰蛋白/肽段及其检测方法研究第104-149页
    第五章 文献综述第104-113页
        5.1 O-G1cNAc糖基化修饰研究第104-113页
            5.1.1 糖基化修饰的概况第104页
            5.1.2 O-GlcNAc修饰与其他翻译后修饰的相互作用第104-106页
            5.1.3 O-GlcNAc修饰的功能研究第106-110页
            5.1.4 O-GlcNAc修饰的富集与鉴定第110-113页
    第六章 凝集素AAL-2富集O-GlcNAc修饰蛋白/肽段及其检测第113-149页
        引言第113页
        6.1 实验材料试剂及溶液配方第113-114页
            6.1.1 实验材料试剂第113-114页
            6.1.2 溶液配方第114页
        6.2 实验方法第114-120页
            6.2.1 凝集素AAL-2的天然纯化及原核表达纯化第114-115页
            6.2.2 凝集素AAL-2偶联的Sepharose 4B亲和层析柱的制备第115页
            6.2.3 凝集素AAL-2偶联的POROS AL层析柱的制备第115-116页
            6.2.4 细胞的核质分离第116页
            6.2.5 PNGase F酶切N-链接的糖修饰处理方法第116页
            6.2.6 小鼠Ⅰ型糖尿病模型建立第116-117页
            6.2.7 大鼠Ⅰ型糖尿病模型建立第117页
            6.2.8 小鼠和大鼠组织总蛋白提取第117页
            6.2.9 蛋白质印记Western blotting第117-118页
            6.2.10 五种人工合成O-GlcNAc修饰标准肽段第118页
            6.2.11 蛋白酶解成肽段第118页
            6.2.12 肽段脱盐第118-119页
            6.2.13 MALDI-TOF-MS检测标准肽段及简单肽段第119页
            6.2.14 Sepharose 4B-AAL2层析柱富集复杂样品O-GlcNAc修饰蛋白第119页
            6.2.15 POROS AL-AAL2层析柱富集复杂样品O-GlcNAc修饰肽段第119-120页
        6.3 实验结果第120-135页
            6.3.1 人工合成标准肽段的纯度及分子量确认第120页
            6.3.2 不同的AAL-2亲和柱富集简单混合样品中的O-GlcNAc修饰肽段第120-123页
            6.3.3 POROS AL-AAL2富集O-GlcNAc修饰蛋白a-Crystallin中的O-GlcNAc修饰肽段第123-125页
            6.3.4 AAL-2富集细胞样品中O-GlcNAc修饰肽段及质谱鉴定第125-126页
            6.3.5 用于做富集实验的组织样品的确定第126-130页
            6.3.6 AAL-2富集糖尿病大鼠肝脏中O-GlcNAc修饰蛋白/肽段及质谱鉴定第130-133页
            6.3.7 AAL-2富集正常大鼠肝脏中O-GlcNAc修饰蛋白/肽段及质谱鉴定第133-135页
        6.4 讨论第135-137页
            6.4.1 AAL-2在富集O-GlcNAc修饰蛋白/肽段方面的优势第135页
            6.4.2 AAL-2富集O-GlcNAc修饰蛋白/肽段的方法探讨第135-137页
        6.5 本章小结第137-149页
参考文献第149-162页
攻博期间发表的文章成果目录第162-163页
致谢第163-165页

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