| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 绪论 | 第8-14页 |
| 1.1 引言 | 第8页 |
| 1.2 植物细胞中ROS的作用和相关信号通路 | 第8-9页 |
| 1.2.1 植物细胞中ROS的产生与功能 | 第8-9页 |
| 1.2.2 植物细胞中的ROS诱导蛋白氧化 | 第9页 |
| 1.2.3 植物细胞中ROS的信号转导途径 | 第9页 |
| 1.3 植物H_2O_2胁迫的研究进展 | 第9-12页 |
| 1.3.1 植物H_2O_2胁迫的分子生物学研究进展 | 第9-10页 |
| 1.3.2 植物H_2O_2胁迫的蛋白质组学研究进展 | 第10-12页 |
| 1.4 小黑杨的研究进展 | 第12页 |
| 1.4.1 小黑杨简介 | 第12页 |
| 1.4.2 小黑杨的分子生物学研究进展 | 第12页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第12-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-20页 |
| 2.1 植物材料培养与H_2O_2胁迫处理 | 第14页 |
| 2.2 小黑杨叶片应答H_2O_2胁迫的生理学分析 | 第14-16页 |
| 2.2.1 光合特性的测定 | 第14页 |
| 2.2.2 可溶性糖、脯氨酸与甜菜碱含量测定 | 第14-15页 |
| 2.2.3 丙二醛含量与电解质外渗率测定 | 第15页 |
| 2.2.4 超氧阴离子生成速率与H_2O_2含量测定 | 第15页 |
| 2.2.5 抗氧化酶活性测定 | 第15-16页 |
| 2.2.6 抗坏血酸与谷胱甘肽含量测定 | 第16页 |
| 2.3 小黑杨叶片应答H_2O_2胁迫蛋白质组学分析 | 第16-20页 |
| 2.3.1 小黑杨叶片蛋白样品制备 | 第16-17页 |
| 2.3.2 蛋白质分离 | 第17-18页 |
| 2.3.3 凝胶图像的扫描和蛋白质表达丰度分析 | 第18页 |
| 2.3.4 统计学分析 | 第18页 |
| 2.3.5 质谱鉴定 | 第18页 |
| 2.3.6 数据搜索 | 第18-19页 |
| 2.3.7 功能分类 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-39页 |
| 3.1 光合和蒸腾特征的分析 | 第20-21页 |
| 3.2 叶片应答H_2O_2的渗透保护物质含量分析 | 第21页 |
| 3.3 叶片应答H_2O_2的丙二醛含量与电解质外渗率分析 | 第21-22页 |
| 3.4 叶片应答H_2O_2的O_2-生成速率与H_2O_2含量分析 | 第22-23页 |
| 3.5 叶片应答H_2O_2的抗氧化酶活性分析 | 第23-25页 |
| 3.6 叶片应答H_2O_2的抗坏血酸与谷胱甘肽含量分析 | 第25-26页 |
| 3.7 叶片应答H_2O_2的蛋白组学分析 | 第26-39页 |
| 3.7.1 胁迫应答蛋白质分离 | 第26-27页 |
| 3.7.2 胁迫应答蛋白质定量分析 | 第27页 |
| 3.7.3 胁迫应答蛋白质鉴定与功能分类 | 第27-28页 |
| 3.7.4 胁迫应答蛋白质聚类分析 | 第28-29页 |
| 3.7.5 叶片应答H_2O_2过程中参与光合作用的蛋白质 | 第29-31页 |
| 3.7.6 叶片应答H_2O_2过程中参与碳和能量代谢的蛋白质 | 第31-34页 |
| 3.7.7 叶片应答H_2O_2过程中参与基础代谢的蛋白质 | 第34-35页 |
| 3.7.8 叶片应答H_2O_2过程中参与胁迫防御的蛋白质 | 第35-36页 |
| 3.7.9 叶片应答H_2O_2过程中参与蛋白质命运的蛋白质 | 第36-37页 |
| 3.7.10 叶片应答H_2O_2过程中参与细胞骨架相关的蛋白质 | 第37页 |
| 3.7.11 叶片应答H_2O_2过程中参与信号转导的蛋白质 | 第37页 |
| 3.7.12 叶片应答H_2O_2过程中多功能或未知功能蛋白质 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-45页 |
| 4.1 H_2O_2影响叶片的渗透平衡 | 第39页 |
| 4.2 H_2O_2影响叶片细胞膜的完整性 | 第39页 |
| 4.3 H_2O_2胁迫影响小黑杨叶片ROS清除途径 | 第39-41页 |
| 4.4 H_2O_2影响叶片的光合作用 | 第41-42页 |
| 4.5 H_2O_2影响叶片的碳和能量代谢及其它机制 | 第42-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
