摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 再生研究概况与进展 | 第11-12页 |
1.1.1 再生的概念 | 第11页 |
1.1.2 再生的研究起源 | 第11页 |
1.1.3 再生的研究现状 | 第11-12页 |
1.2 蚯蚓再生的研究 | 第12-15页 |
1.2.1 蚯蚓再生研究的历史 | 第13页 |
1.2.2 蚯蚓再生机制的研究 | 第13-15页 |
1.3 多能性基因 | 第15-18页 |
1.3.1 Oct4 | 第16-17页 |
1.3.2 Nanog | 第17页 |
1.3.3 Sox2 | 第17-18页 |
1.3.4 c-Myc | 第18页 |
1.3.5 Lin28 | 第18页 |
1.4 再生与多能性基因 | 第18-19页 |
1.5 该课题的研究意义与实验设计 | 第19-20页 |
1.5.1 该课题的研究意义 | 第19页 |
1.5.2 该课题的实验设计 | 第19-20页 |
1.6 技术路线 | 第20-21页 |
2 蚯蚓多能性基因的克隆 | 第21-43页 |
2.1 材料和方法 | 第21-30页 |
2.1.1 实验材料 | 第21页 |
2.1.2 主要化学试剂和仪器设备 | 第21-22页 |
2.1.3 主要试剂的配置 | 第22页 |
2.1.4 实验方法 | 第22-30页 |
2.2 结果 | 第30-42页 |
2.2.1 Oct4基因部分片段生物信息学分析 | 第30-32页 |
2.2.2 Nanog基因部分片段生物信息学分析 | 第32-34页 |
2.2.3 Sox2基因生物信息学分析 | 第34-38页 |
2.2.4 c-Myc基因部分片段生物信息学分析 | 第38-40页 |
2.2.5 Lin28基因部分片段生物信息学分析 | 第40-42页 |
2.3 讨论 | 第42页 |
2.4 结论 | 第42-43页 |
3 蚯蚓多能性基因在再生过程中表达研究 | 第43-59页 |
3.1 材料和方法 | 第43页 |
3.1.1 实验动物 | 第43页 |
3.1.2 试剂 | 第43页 |
3.2 实验方法 | 第43-46页 |
3.2.1 样品的采集 | 第43-44页 |
3.2.2 总RNA的提取 | 第44页 |
3.2.3 cDNA的合成 | 第44-45页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR | 第45-46页 |
3.2.5 数据处理 | 第46页 |
3.3 结果 | 第46-54页 |
3.3.1 熔解曲线的建立 | 第46-47页 |
3.3.2 多能性基因在不同体段的表达水平 | 第47-48页 |
3.3.3 头部体段再生过程中多能性基因的表达 | 第48-50页 |
3.3.4 躯干体段再生过程中多能性基因的表达 | 第50-52页 |
3.3.5 尾部体段在再生过程中多能性基因的表达 | 第52-54页 |
3.4 讨论 | 第54-57页 |
3.4.1 多能性细胞在不同体段的表达具有特异性 | 第54页 |
3.4.2 多能性基因在不同体段再生过程中的表达模式类似 | 第54-55页 |
3.4.3 不同体段再生过程中表达模式类似 | 第55-56页 |
3.4.4 再生过程的细胞来源分析 | 第56-57页 |
3.5 结论 | 第57-59页 |
4 多能性基因在蚯蚓早期发育阶段的表达研究 | 第59-67页 |
4.1 材料和方法 | 第59页 |
4.1.1 实验动物 | 第59页 |
4.1.2 试剂 | 第59页 |
4.2 实验方法 | 第59-60页 |
4.2.1 样品的采集 | 第59-60页 |
4.2.2 总RNA的提取 | 第60页 |
4.2.3 cDNA反转录 | 第60页 |
4.2.4 实时荧光定量PCR | 第60页 |
4.2.5 数据处理和分析 | 第60页 |
4.3 结果 | 第60-62页 |
4.4 讨论 | 第62-65页 |
4.4.1 多能性基因在赤子爱胜蚓发育早期的表达 | 第62-65页 |
4.4.2 多能性基因在赤子爱胜蚓再生过程和发育过程中表达的比较 | 第65页 |
4.5 结论 | 第65-67页 |
5 结论和展望 | 第67-69页 |
5.1 结论 | 第67-68页 |
5.2 展望 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-75页 |
缩略词表 | 第75-76页 |
在读期间已发表及待发表的论文 | 第76-77页 |
致谢 | 第77页 |