| Abstract | 第7-8页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| Abbreviations | 第10-22页 |
| Chapter 1 Literature review | 第22-64页 |
| 1.1 General introduction to natural products | 第22-39页 |
| 1.1.1 Flaveria bidentis L. Kuntze | 第24-31页 |
| 1.1.1.1 Introduction | 第24-25页 |
| 1.1.1.2 Main bioactive components in F. bidentis L.(Kuntze) | 第25-31页 |
| 1.1.2 Mangifera indica L. (Mango) | 第31-39页 |
| 1.1.2.1 Introduction | 第31-36页 |
| 1.1.2.3 Biological importance of mango phenolic compounds | 第36-39页 |
| 1.1.2.3.1 Antioxidants | 第36-37页 |
| 1.1.2.3.2 Anticancers | 第37页 |
| 1.1.2.3.3 Anti-diabetics | 第37-38页 |
| 1.1.2.3.4 Anti-inflammatory | 第38页 |
| 1.1.2.3.5 Antidiarrheal effects | 第38页 |
| 1.1.2.3.6 Other pharmacological uses | 第38-39页 |
| 1.2 Extraction methods of bioactive compounds | 第39-46页 |
| 1.2.1 Microwave-assisted extraction (MAE) | 第40-41页 |
| 1.2.2 Ultrasound assisted extraction technique | 第41-43页 |
| 1.2.3 Supercritical fluid extraction(SFE) | 第43-45页 |
| 1.2.4 Heat reflux extraction (HRE) | 第45-46页 |
| 1.3 Adsorption and desorption separation method | 第46-51页 |
| 1.3.1 Macroporous resins | 第46页 |
| 1.3.2 Adsorption enrichment by macroporous resin | 第46-48页 |
| 1.3.3 Applications of adsorption and desorption process | 第48-51页 |
| 1.4 Chromatographic separation techniques | 第51-56页 |
| 1.4.1 High speed countercurrent chromatography (HSCCC) | 第51-54页 |
| 1.4.1.1 Principle of HSCCC | 第51-52页 |
| 1.4.1.2 Solvent system selection for HSCCC | 第52-53页 |
| 1.4.1.3 HSCCC an efficient separation method | 第53-54页 |
| 1.4.2 High performance liquid chromatography | 第54-56页 |
| 1.5 Bio-activity tests | 第56-64页 |
| 1.5.1 Antioxidant test of phenolic compounds | 第56-60页 |
| 1.5.1.1 General mechanism action of antioxidants | 第57-58页 |
| 1.5.1.2 DPPH (2,2-diphenyl-picrylhydrazyl)assay: | 第58-60页 |
| 1.5.1.2.1 Reaction mechanism of DPPH | 第58-60页 |
| 1.5.2 Antimicrobial test | 第60-64页 |
| Chapter 2 Separation of flavonoids from Flaveria bidentis (L.)Kuntze employing macroporousresins followed by HSCCC | 第64-92页 |
| 2.1 Background | 第64-66页 |
| 2.2 Materials and methods | 第66-74页 |
| 2.2.1 Chemicals | 第66-67页 |
| 2.2.2 Apparatus | 第67-68页 |
| 2.2.3 Preparation of F. bidentis extracts | 第68-69页 |
| 2.2.4 Analysis | 第69-70页 |
| 2.2.4.1 Total flavonoids concentration determination | 第69-70页 |
| 2.2.5 Adsorbents | 第70页 |
| 2.2.6 Total flavonoids' static adsorption and desorption tests | 第70-71页 |
| 2.2.7 Dynamic adsorption and desorption of total flavonoids | 第71页 |
| 2.2.8 Dynamic adsorption and desorption of target compounds | 第71-72页 |
| 2.2.9 Determination of adsorption capacity, adsorption, and desorption ratios | 第72页 |
| 2.2.10 Development of biphasic solvent system/sample solution | 第72-73页 |
| 2.2.11 HSCCC separation procedure | 第73-74页 |
| 2.2.12 HPLC analysis | 第74页 |
| 2.3 Results and discussion | 第74-91页 |
| 2.3.1 MRs selection | 第74-76页 |
| 2.3.2 Adsorption and desorption conditions for total flavonoids: | 第76-83页 |
| 2.3.2.1 Effect of initial concentration of solution on the adsorption capacity | 第76-77页 |
| 2.3.2.2 Effect of pH of the solution on total flavonoids recovery | 第77-78页 |
| 2.3.2.3 Effect of flow rate on the total flavonoids recovery | 第78-79页 |
| 2.3.2.4 Effect of concentration of ethanol and its elution volume on the purity and recoveryof total flavonoids | 第79-80页 |
| 2.3.2.5 Effect of volume of water on total flavonoids' recovery and purity | 第80-81页 |
| 2.3.2.6 Dynamic adsorption curve | 第81-82页 |
| 2.3.2.7 Reproductive use of D4020 resin | 第82-83页 |
| 2.3.3 Isorhamnetin 3-sulfate and astragalin adsorption and desorption | 第83-89页 |
| 2.3.3.1 Isorhamnetin 3-sulfate adsorption isotherms on D4020 resin | 第83-85页 |
| 2.3.3.2 Adsorption and desorption conditions for astragalin and isorhamnetin 3-sulfate | 第85-87页 |
| 2.3.3.3 Ethanol concentration optimization | 第87-88页 |
| 2.3.3.4 Dynamic desorption curve on D4020 resin | 第88-89页 |
| 2.3.4 Purification by HSCCC | 第89-91页 |
| 2.4 Conclusion | 第91-92页 |
| Chapter 3 Separation of phenolic compounds from the ethanol extracts of Mangifera indica. Lflowers by using two-step HSCCC (normal phase mode leading to elution extrusion) | 第92-114页 |
| 3.1 Background of Mangifera indica. L | 第92-94页 |
| 3.2 Experimental | 第94-98页 |
| 3.2.1. Instrument | 第94-95页 |
| 3.2.2. Chemicals | 第95页 |
| 3.2.3. Mango flowers crude extract preparation | 第95-96页 |
| 3.2.4. Calculation of partition coefficient (K) | 第96-97页 |
| 3.2.5. Solvent system preparation for HSCCC | 第97页 |
| 3.2.6. HSCCC separation procedure | 第97-98页 |
| 3.2.7. Sample analysis (gradient analysis conditions of HPLC) | 第98页 |
| 3.3 Results and discussion | 第98-112页 |
| 3.3.1 Solvent system for HSCCC | 第98-102页 |
| 3.3.2 HSCCC separation of target compounds and HPLC analysis | 第102-107页 |
| 3.3.3 Structural illustration for target compounds | 第107-112页 |
| 3.4 Conclusion | 第112-114页 |
| Chapter 4 Antioxidant potency (DPPH-assay) and anti-microbial activity of the mango flowerextract against pathogens | 第114-126页 |
| 4.1 Background | 第114-116页 |
| 4.2 Material and method | 第116-119页 |
| 4.2.1 Plant collection | 第116-117页 |
| 4.2.2 Bacterial strains | 第117页 |
| 4.2.3 Chemicals and glassware | 第117页 |
| 4.2.4 Sample preparation | 第117页 |
| 4.2.5 DPPH-assay | 第117-118页 |
| 4.2.6 Anti-microbial test | 第118-119页 |
| 4.2.6.1 Disc diffusion method | 第118-119页 |
| 4.2.6.2 Minimal inhibition concentration (MIC) | 第119页 |
| 4.3 Results and discussion | 第119-124页 |
| 4.3.1 DPPH-assay (antioxidant test) | 第119-121页 |
| 4.3.2 Antimicrobial susceptibility of mango flowers and leaves extract | 第121-124页 |
| 4.3.2.1 Minimum inhibitory concentration (MIC) | 第123-124页 |
| 4.4 Conclusion | 第124-126页 |
| Chapter 5 Conclusion | 第126-128页 |
| Chapter 6 References | 第128-161页 |
| List of Publications | 第161-162页 |
| Acknowledgements | 第162-163页 |
| Nusrat Shaeen (Author) | 第163-165页 |
| Professor Dr. Yun WEI (Research Supervisor) | 第165-166页 |
| 附件 | 第166-167页 |
