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野鸟中NDV、ALV、IBV和IBDV四重RT-PCR检测

摘要第6-7页
Abstract第7页
第1章 综述第11-25页
    1 新城疫病毒检测方法的研究进展第11-14页
        1.1 NDV的基本特征第11-12页
        1.2 NDV的检测方法第12-14页
    2 禽白血病病毒检测方法的研究进展第14-18页
        2.1 ALV的基本特征第15页
        2.2 ALV的检测方法第15-18页
    3 禽传染性支气管炎病毒检测方法的研究进展第18-21页
        3.1 IBV的基本特征第18-19页
        3.2 IBV的检测方法第19-21页
    4 禽传染性法氏囊病病毒检测方法的研究进展第21-23页
        4.1 IBDV的基本特征第21-22页
        4.2 IBDV的检测方法第22-23页
    5 立题依据及意义第23-25页
第2章 实验材料第25-29页
    1 实验仪器第25-26页
    2 分子生物学试剂第26页
    3 实验溶液和缓冲液第26-27页
    4 细胞培养试剂第27页
    5 质粒第27页
    6 菌株第27-28页
    7 病毒株第28页
    8 细胞系第28页
    9 野鸟第28-29页
第3章 单一RT-PCR构建NDV、ALV、IBV、IBDV阳性对照质粒第29-38页
    1 实验方法第29-34页
        1.1 引物设计第29页
        1.2 细胞复苏第29-30页
        1.3 细胞传代培养第30页
        1.4 细胞冻存第30页
        1.5 病毒增殖第30-31页
        1.6 RNA提取第31页
        1.7 cDNA合成第31页
        1.8 单一PCR反应第31-32页
        1.9 PCR产物纯化第32页
        1.10 连接第32页
        1.11 DH5a感受态细胞制备第32-33页
        1.12 转化第33页
        1.13 质粒提取第33页
        1.14 双酶切验证第33-34页
        1.15 PCR验证第34页
        1.16 测序验证第34页
    2 实验结果第34-36页
        2.1 RT-PCR扩增第34-35页
        2.2 克隆质粒BamHI/Hind阳性克隆验证第35页
        2.3 测序验证第35-36页
    3 小结与讨论第36-38页
第4章 NDV、IBV、ALV、IBDV四重RT-PCR建立第38-46页
    1 实验方法第38-40页
        1.1 梯度单一PCR退火温度优化第38页
        1.2 正交法优化四种病毒引物的比例第38-39页
        1.3 梯度四重PCR第39页
        1.4 正交法优化PCR第39-40页
    2 实验结果第40-44页
        2.1 单一PCR最佳退火温度第40-41页
        2.2 四重PCR最佳引物比例第41-42页
        2.3 四重PCR最佳退火温度第42-43页
        2.4 四重PCR最佳反应体系第43-44页
    3 小结与讨论第44-46页
第5章 四重PCR特异性、灵敏度验证第46-51页
    1 实验方法第46-47页
        1.1 四重PCR特异性验证第46页
        1.2 四重PCR灵敏度验证第46-47页
        1.3 四重RT-PCR灵敏度验证第47页
    2 实验结果第47-49页
        2.1 四重RT-PCR检测特异性验证第47-48页
        2.2 四重PCR检测灵敏度验证第48页
        2.3 四重RT-PCR检测灵敏度验证第48-49页
    3 小结与讨论第49-51页
第6章 野鸟中NDV、IBV、ALV和IBDV四重RT-PCR检测第51-56页
    1 实验方法第51-52页
        1.1 鸟类解剖第51页
        1.2 RNA提取第51页
        1.3 四重RT-PCR检测第51-52页
    2 实验结果第52-54页
    3 小结与讨论第54-56页
参考文献第56-61页
在校期间发表的和待发表的论文第61-62页
致谢第62页

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