| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第10-15页 |
| 参考文献 | 第12-15页 |
| 材料和方法 | 第15-28页 |
| 1 实验材料 | 第15-18页 |
| 1.1 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.2 主要仪器 | 第16页 |
| 1.3 溶液配制 | 第16-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.1 细胞株 | 第18页 |
| 2.2 细胞复苏 | 第18-19页 |
| 2.3 细胞的传代 | 第19页 |
| 2.4 MTT检测细胞活力 | 第19页 |
| 2.5 Western blot检测蛋白表达 | 第19-21页 |
| 2.6 RT-PCR技术检测mRNA的表达 | 第21-23页 |
| 2.7 质粒的扩增 | 第23页 |
| 2.8 质粒DNA小量提取 | 第23-24页 |
| 2.9 转染GFP-LC3 | 第24-25页 |
| 2.10 NP-40 法分离可溶和不可溶 α-synuclein | 第25-26页 |
| 2.11 Biotin Switch Technique(BST)检测S-巯基化水平 | 第26-27页 |
| 2.12 统计方法 | 第27-28页 |
| 结果 | 第28-37页 |
| 1 NaHS和GYY4137 对PC12 细胞活力的影响 | 第28页 |
| 2 H_2S诱导PC12 细胞自噬活性上调 | 第28-30页 |
| 3 H_2S抑制MTOR/P70S6K信号通路活性 | 第30-32页 |
| 4 H_2S促使AMPK磷酸化升高 | 第32-33页 |
| 5 H_2S促使AMPK硫巯基化修饰增加 | 第33-34页 |
| 6 H_2S能逆转鱼藤酮诱导的自噬障碍及 α-synuclein的聚集 | 第34-37页 |
| 讨论 | 第37-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 综述 气体信号分子NO、CO和H_2S的生物学研究进展 | 第45-55页 |
| 摘要 | 第45-46页 |
| 1 NO | 第46-48页 |
| 1.1 NO的合成代谢 | 第46页 |
| 1.2 NO的生物学功能 | 第46-47页 |
| 1.3 NO的分子转导机制 | 第47-48页 |
| 2 CO | 第48-49页 |
| 2.1 CO合成代谢 | 第48页 |
| 2.2 CO的生物学功能 | 第48-49页 |
| 2.3 CO信号转导机制 | 第49页 |
| 3 H_2S | 第49-52页 |
| 3.1 H_2S的合成代谢 | 第49-50页 |
| 3.2 H_2S的生物学功能 | 第50-51页 |
| 3.3 H_2S的信号转导机制 | 第51-52页 |
| 4 结语与展望 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文及科研成果 | 第55-56页 |
| 中英文对照缩略词表 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
