| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第13-14页 |
| 第一章 文献研究 | 第14-31页 |
| 1.1 2 型糖尿病的发病机制 | 第14-19页 |
| 1.1.1 遗传因素 | 第14-16页 |
| 1.1.2 环境因素 | 第16-17页 |
| 1.1.3 胰岛素抵抗与胰岛素分泌缺陷 | 第17-19页 |
| 1.1.4 其他因素 | 第19页 |
| 1.1.5 总结 | 第19页 |
| 1.2 β细胞损伤与2型糖尿病的关系 | 第19-24页 |
| 1.2.1 高糖高脂 | 第20-21页 |
| 1.2.2 氧化应激 | 第21-22页 |
| 1.2.3 内质网应激 | 第22-24页 |
| 1.2.4 总结 | 第24页 |
| 1.3 与2型糖尿病调控效应相关的miRNA的研究进展 | 第24-27页 |
| 1.3.1 miRNA对胰岛β细胞功能的影响 | 第25页 |
| 1.3.2 miRNA调节胰岛素的释放 | 第25-26页 |
| 1.3.3 miRNA与胰岛素抵抗 | 第26-27页 |
| 1.3.4 总结 | 第27页 |
| 1.4 桑叶与2型糖尿病的关系 | 第27-31页 |
| 1.4.1 桑叶生物碱 | 第28-29页 |
| 1.4.2 桑叶总多糖 | 第29页 |
| 1.4.3 桑叶总黄酮 | 第29-30页 |
| 1.4.4 总结 | 第30-31页 |
| 第二章 桑叶活性部位的制备工艺研究 | 第31-44页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第31-32页 |
| 2.1.1 仪器 | 第31页 |
| 2.1.2 材料 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.2.1 桑叶总黄酮的制备工艺研究 | 第32-33页 |
| 2.2.2 桑叶总生物碱的制备工艺研究 | 第33-34页 |
| 2.2.3 桑叶总多糖的制备工艺研究 | 第34-35页 |
| 2.3 结果与分析 | 第35-42页 |
| 2.3.1 桑叶总黄酮制备工艺的确证 | 第35-38页 |
| 2.3.2 桑叶总生物碱制备工艺的确证 | 第38-40页 |
| 2.3.3 桑叶总多糖制备工艺的确证 | 第40-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 桑叶活性部位对2型糖尿病大鼠胰岛β细胞保护作用的研究 | 第44-61页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第44页 |
| 3.1.1 仪器 | 第44页 |
| 3.1.2 材料 | 第44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-48页 |
| 3.2.1 2型糖尿病动物模型的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.2 实验设计和分组 | 第45页 |
| 3.2.3 日常观察指标 | 第45页 |
| 3.2.4 空腹血糖的测定 | 第45页 |
| 3.2.5 大鼠血液样品的采集 | 第45-46页 |
| 3.2.6 组织脏器标本的取材 | 第46页 |
| 3.2.7 组织HE染色及形态学观察 | 第46-47页 |
| 3.2.8 胰腺组织形态学电镜观察 | 第47-48页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-59页 |
| 3.3.1 日常观察指标 | 第48页 |
| 3.3.2 空腹血糖的测定 | 第48-50页 |
| 3.3.3 空腹胰岛素水平的测定 | 第50-53页 |
| 3.3.4 桑叶活性部位对T2DM大鼠组织病理形态学的改变 | 第53-59页 |
| 3.4 讨论 | 第59-61页 |
| 3.4.1 桑叶活性部位正常对照组设立的意义 | 第59-60页 |
| 3.4.2 桑叶活性部位对胰岛β细胞的影响以及对2型糖尿病多靶点的改善作用 | 第60-61页 |
| 第四章 桑叶活性部位对大鼠INS-1细胞凋亡保护作用的microRNA机制研究 | 第61-90页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第61-62页 |
| 4.1.1 仪器 | 第61页 |
| 4.1.2 材料 | 第61-62页 |
| 4.2 实验方法 | 第62-67页 |
| 4.2.1 INS-1细胞常规培养 | 第62-63页 |
| 4.2.2 INS-1细胞活性检测 | 第63页 |
| 4.2.3 流式细胞仪Annexin V/PI双染法分析细胞早期凋亡率 | 第63页 |
| 4.2.4 荧光定量RT-PCR检测细胞Bcl-2、Bax、caspase3 mRNA的表达 | 第63-64页 |
| 4.2.5 INS-1细胞microRNA微阵列芯片检测 | 第64-66页 |
| 4.2.6 差异表达的microRNAs生物学分析 | 第66页 |
| 4.2.7 候选靶基因KEGG生物通路富集分析 | 第66页 |
| 4.2.8 候选靶基因Gene Ontology(GO)基因功能富集分析 | 第66-67页 |
| 4.2.9 构建miRNAs与靶基因的调控网络 | 第67页 |
| 4.2.10 miRNA基因芯片结果的PCR验证 | 第67页 |
| 4.3 结果与分析 | 第67-88页 |
| 4.3.1 桑叶提取物对INS-1细胞活性的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.2 桑叶活性部位对INS-1细胞凋亡的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.3 Bcl-2、Bax、caspase3基因实时荧光定量PCR检测 | 第69-70页 |
| 4.3.4 INS-1细胞microRNA提取的质量检测 | 第70-71页 |
| 4.3.5 桑叶活性部位干预后INS-1细胞差异miRNAs表达谱 | 第71-74页 |
| 4.3.6 INS-1细胞基因芯片候选miRNAs的预测 | 第74-75页 |
| 4.3.7 miRNA基因芯片结果在INS-1细胞的PCR验证 | 第75-77页 |
| 4.3.8 miRNA基因芯片结果在T2DM大鼠胰腺组织上的PCR验证 | 第77-80页 |
| 4.3.9 生物信息学分析 | 第80-88页 |
| 4.4 讨论 | 第88-90页 |
| 结语与展望 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-102页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第102-103页 |
| 统计学审核证明 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
