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猪轮状病毒GD-01-2015的全基因序列分析及双夹心ELISA方法的建立

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
符号说明第9-11页
文献综述第11-19页
    1 轮状病毒病原学特征第11-12页
        1.1 轮状病毒的形态结构和理化性质第11-12页
        1.2 轮状病毒的培养特性第12页
    2 轮状病毒的分型第12-13页
    3 轮状病毒的基因组结构、蛋白及功能第13-15页
        3.1 轮状病毒的基因组结构特征第13页
        3.2 轮状病毒的蛋白及其作用第13-15页
    4 猪轮状病毒的致病机理第15-16页
    5 猪轮状病毒的诊断技术第16-17页
        5.1 猪轮状病毒临床诊断第16页
        5.2 猪轮状病毒实验室诊断第16-17页
    6 抗猪轮状病毒单克隆抗体的研究进展第17-18页
    7 研究目的和意义第18-19页
研究内容一 猪轮状病毒GD-01-2015的全基因序列分析第19-50页
    1 实验材料第19页
        1.1 主要试剂和生物材料第19页
        1.2 主要仪器第19页
    2 方法第19-24页
        2.1 病毒的分离与增殖第19-21页
        2.2 病毒的全基因测序第21-23页
        2.3 病毒全基因测序结果分析第23-24页
    3 结果第24-48页
        3.1 病毒的分离与增殖第24-25页
        3.2 PoRV-GD-01-2015全基因测序第25-27页
        3.3 PoRV-GD-01-2015测序分析第27-48页
    4 讨论第48-50页
研究内容二 猪轮状病毒单克隆抗体的制备第50-60页
    1 实验材料第50-51页
        1.1 病毒、实验动物和细胞第50页
        1.2 主要实验试剂第50-51页
        1.3 主要实验仪器第51页
    2 实验方法第51-55页
        2.1 PoRV病毒的扩增第51页
        2.2 PoRV病毒的浓缩第51-52页
        2.3 透射电镜观察病毒第52页
        2.4 动物免疫第52页
        2.5 细胞融合第52-53页
        2.6 间接免疫荧光法(IFA)筛选阳性杂交瘤细胞第53页
        2.7 阳性细胞的亚克隆第53页
        2.8 杂交瘤细胞的冻存与复苏第53-54页
        2.9 腹水的制备及抗体的纯化第54页
        2.10 单克隆抗体的生物学特性鉴定第54-55页
    3 结果第55-58页
        3.1 透射电镜观察结果第55-56页
        3.2 阳性杂交瘤细胞株的建立第56-57页
        3.3 单克隆抗体亚类鉴定第57页
        3.4 Western-blot鉴定第57页
        3.5 单克隆抗体的特异性鉴定第57-58页
        3.6 单克隆抗体纯化效果第58页
    4 讨论第58-60页
研究内容三 猪轮状病毒双夹心ELISA方法的建立第60-72页
    1 实验材料第60-61页
        1.1 病毒和抗体第60页
        1.2 主要实验试剂第60-61页
        1.3 主要实验仪器第61页
    2 实验方法第61-64页
        2.1 单克隆抗体的相加ELISA实验第61页
        2.2 抗体的标记第61-62页
        2.3 双夹心ELISA方法的建立第62-63页
        2.4 检测限的摸索第63页
        2.5 交叉反应实验第63页
        2.6 批内重复性和批间重复性实验第63-64页
    3 结果第64-71页
        3.1 相加ELISA实验结果第64页
        3.2 双夹心ELISA方法的建立第64-68页
        3.3 检测限的摸索第68-69页
        3.4 交叉反应实验结果第69页
        3.5 批内重复性和批间重复性实验结果第69-71页
    4 讨论第71-72页
全文总结第72-73页
参考文献第73-78页
附录第78-81页
致谢第81-82页
攻读学位期间发表的学术论文第82-83页

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