| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 引言 | 第8-12页 |
| 1 研究内容及技术路线 | 第12-15页 |
| 1.1 研究内容 | 第12-13页 |
| 1.1.1 研究SAA在AML细胞株中对细胞生长、凋亡的影响 | 第12页 |
| 1.1.2 研究SAA作用下对线粒体凋亡通路中关键蛋白分子的影响 | 第12页 |
| 1.1.3 研究SAA是否通过抑制PI3K/Akt途径在AML细胞中发挥作用及其潜在作用靶点 | 第12页 |
| 1.1.4 利用裸鼠皮下成瘤技术构建AML小鼠模型研究在体环境下SAA对AML肿瘤细胞生长的影响 | 第12页 |
| 1.1.5 在AML原代肿瘤细胞及非恶性增殖性疾病患者的骨髓单个核细胞中进一步验证SAA的抗肿瘤作用 | 第12-13页 |
| 1.2 技术路线 | 第13-15页 |
| 1.2.1 明确SAA在AML不同细胞株中对细胞生长、凋亡的作用，同时探究SAA对PI3K/Akt信号通路的调控作用 | 第13-14页 |
| 1.2.2 在体实验进一步验证SAA对体内AML细胞的抗肿瘤作用 | 第14页 |
| 1.2.3 在原代AML细胞中验证SAA的抗肿瘤作用，并与SAA对骨髓正常单个核细胞的作用相比较 | 第14-15页 |
| 2 实验材料及研究方法 | 第15-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-18页 |
| 2.1.1 丹酚酸A | 第15页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第15页 |
| 2.1.3 裸鼠 (BALB/c ASlac-nu) | 第15页 |
| 2.1.4 骨髓单个核细胞 | 第15页 |
| 2.1.5 主要的仪器设备 | 第15-16页 |
| 2.1.6 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.7 试剂配制 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.2.1 丹酚酸A的溶解与稀释 | 第18页 |
| 2.2.2 细胞株的复苏、培养及冻存 | 第18-19页 |
| 2.2.3 MTS法检测细胞生长 | 第19页 |
| 2.2.4 细胞凋亡检测 | 第19-20页 |
| 2.2.5 蛋白印记 | 第20页 |
| 2.2.6 裸鼠皮下成瘤实验构建AML动物模型 | 第20-21页 |
| 2.2.7 骨髓原代细胞分离 | 第21页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第21-22页 |
| 3 实验结果 | 第22-33页 |
| 3.1 SAA以浓度依赖的方式抑制AML细胞活性 | 第22-23页 |
| 3.2 SAA诱导AML细胞凋亡 | 第23-25页 |
| 3.3 SAA诱导AML细胞中PARP降解及caspase-3 活化，并伴随Bcl-2 家族中蛋白的表达异常下调 | 第25-26页 |
| 3.4 SAA抑制AML细胞中PI3K/Akt信号通路的活性 | 第26-27页 |
| 3.5 SAA抑制在体肿瘤中AML细胞的生长速度 | 第27-29页 |
| 3.6 SAA诱导AML原代细胞凋亡 | 第29-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 5 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-39页 |
| 附录A 缩略词 | 第39-40页 |
| 在学研究成果 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41页 |
