| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 双子叶植物与水稻花器官 | 第11-12页 |
| 1.2 花器官发育模型 | 第12-13页 |
| 1.3 花器官的发育 | 第13页 |
| 1.4 花分生组织的形成 | 第13-14页 |
| 1.5 水稻花器官发育过程调控 | 第14-16页 |
| 1.6 小穗组织分化过程 | 第16-17页 |
| 1.7 护颖突变体的研究意义 | 第17-19页 |
| 第2章 引言 | 第19-20页 |
| 第3章 材料与方法 | 第20-31页 |
| 3.1 实验设备与试剂 | 第20-21页 |
| 3.1.1 主要设备仪器 | 第20页 |
| 3.1.2 主要试剂及耗材 | 第20-21页 |
| 3.2 试验材料 | 第21页 |
| 3.3 实验方法 | 第21-31页 |
| 3.3.1 F_2遗传群体的构建 | 第21页 |
| 3.3.2 表型鉴定与农艺性状调查 | 第21页 |
| 3.3.3. 突变体的形态学观察 | 第21-23页 |
| 3.3.3.1 体视镜观察 | 第21页 |
| 3.3.3.2 石蜡切片观察 | 第21-22页 |
| 3.3.3.3 扫描电镜分析 | 第22-23页 |
| 3.3.4 材料提取DNA | 第23-24页 |
| 3.3.4.1 CTAB简易提取法 | 第23-24页 |
| 3.3.4.2 碱煮法 | 第24页 |
| 3.3.5 SSR分子标记分析 | 第24-25页 |
| 3.3.6 遗传作图 | 第25页 |
| 3.3.7 候选基因的测序分析 | 第25-28页 |
| 3.3.7.1 凝胶电泳 | 第26页 |
| 3.3.7.2 回收目的片段 | 第26-27页 |
| 3.3.7.3 目的片段回收与pMD19-T载体的连接 | 第27页 |
| 3.3.7.4 大肠杆菌感受态转化 | 第27-28页 |
| 3.3.7.5 质粒提取 | 第28页 |
| 3.3.8 候选基因的表达分析 | 第28-31页 |
| 3.3.8.1 RNA的提取 | 第28-29页 |
| 3.3.8.2 RNA纯化及cDNA的合成 | 第29-30页 |
| 3.3.8.3 实时荧光定量PCR(real time qPCR)分析 | 第30-31页 |
| 第4章 结果与分析 | 第31-38页 |
| 4.1 lsl突变体植株形态学分析 | 第31-32页 |
| 4.2 lsl突变体花器官的组织学分析 | 第32-34页 |
| 4.3 lsl突变体小穗发育过程分析 | 第34-35页 |
| 4.4 lsl的遗传分析 | 第35页 |
| 4.5 LSL基因的分子定位 | 第35-36页 |
| 4.6 LSL候选基因分析 | 第36-38页 |
| 第5章 结论与讨论 | 第38-41页 |
| 5.1 讨论 | 第38-40页 |
| 5.1.1 LSL可能抑制护颖的发育 | 第38页 |
| 5.1.2 水稻护颖可能是由侧生小穗的外稃退化形成 | 第38-39页 |
| 5.1.3 LSL可能还参与水稻的其他调控 | 第39-40页 |
| 5.2 主要结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 在校期间所参加的科研课题和发表论文 | 第49页 |
