| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 1 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 豆芋研究现状 | 第9-11页 |
| 1.2.1 国外研究现状 | 第9-11页 |
| 1.2.2 国内研究现状 | 第11页 |
| 1.3 豆芋有效成分 | 第11-12页 |
| 1.4 豆芋主要功能 | 第12页 |
| 1.5 多糖简介 | 第12-15页 |
| 1.5.1 植物多糖的提取 | 第13页 |
| 1.5.2 植物多糖的分离纯化 | 第13-14页 |
| 1.5.3 植物多糖的免疫调节作用 | 第14-15页 |
| 1.6 课题研究内容、目的和意义 | 第15-16页 |
| 1.6.1 课题研究内容 | 第15页 |
| 1.6.2 目的和意义 | 第15-16页 |
| 2 豆芋多糖的提取分离 | 第16-24页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.2.1 豆芋粗多糖的提取 | 第17页 |
| 2.2.2 粗多糖脱蛋白质 | 第17-18页 |
| 2.2.3 粗多糖脱色 | 第18页 |
| 2.2.4 DEAE-52纤维素纯化多糖 | 第18-19页 |
| 2.2.5 Sephadex G-100葡聚糖凝胶纯化多糖 | 第19页 |
| 2.2.6 透析 | 第19页 |
| 2.2.7 总糖含量的测定 | 第19-20页 |
| 2.2.8 蛋白质含量的测定 | 第20页 |
| 2.3 结果与分析 | 第20-23页 |
| 2.3.1 DEAE-52纤维素洗脱曲线 | 第20-21页 |
| 2.3.2 Sephadex G-100葡聚糖凝胶洗脱曲线 | 第21-22页 |
| 2.3.3 豆芋多糖得率 | 第22页 |
| 2.3.4 豆芋总糖含量 | 第22-23页 |
| 2.3.5 豆芋蛋白质含量 | 第23页 |
| 2.4 小结 | 第23-24页 |
| 3 豆芋多糖结构分析 | 第24-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第24-25页 |
| 3.1.2 仪器 | 第25页 |
| 3.1.3 傅里叶红外检测多糖 | 第25页 |
| 3.1.4 HPLC测定多糖组成和摩尔比 | 第25页 |
| 3.1.5 GPC检测多糖分子量 | 第25-26页 |
| 3.1.6 核磁共振检测多糖 | 第26页 |
| 3.2 结果与分析 | 第26-40页 |
| 3.2.1 傅里叶红外光谱检测结果与分析 | 第26-28页 |
| 3.2.2 HPLC检测结果与分析 | 第28-32页 |
| 3.2.3 GPC检测结果与分析 | 第32-35页 |
| 3.2.4 核磁共振H谱检测结果与分析 | 第35-38页 |
| 3.2.5 核磁共振C谱检测结果与分析 | 第38-40页 |
| 3.3 小结 | 第40-42页 |
| 4 豆芋多糖的免疫活性研究 | 第42-50页 |
| 4.1 材料与方法 | 第42-43页 |
| 4.1.1 试剂 | 第42页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 4.1.3 RAW264.7巨噬细胞的培养 | 第43页 |
| 4.1.4 MTT法测定RAW 264.7巨噬细胞活性 | 第43页 |
| 4.1.5 中性红法测定RAW 264.7巨噬细胞的吞噬能力 | 第43页 |
| 4.1.6 Griess法测定RAW 264.7巨噬细胞的NO分泌量 | 第43页 |
| 4.1.7 数据处理及统计 | 第43页 |
| 4.2 结果与分析 | 第43-49页 |
| 4.2.1 豆芋多糖对RAW 264.7巨噬细胞增殖的影响 | 第43-45页 |
| 4.2.2 豆芋多糖对RAW 264.7巨噬细胞的吞噬能力的影响 | 第45-47页 |
| 4.2.3 豆芋多糖对RAW 264.7巨噬细胞的NO分泌量的影响 | 第47-49页 |
| 4.3 小结 | 第49-50页 |
| 5 主要结论、创新点及展望 | 第50-51页 |
| 5.1 主要结论 | 第50页 |
| 5.2 创新点 | 第50页 |
| 5.3 展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 作者简介 | 第56-57页 |
| 在校期间发表论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
