| 缩略语表 | 第6-10页 |
| 英文摘要 | 第10页 |
| 中文摘要 | 第11-12页 |
| 第一部分 层层自组装单细胞包被模型对神经干细胞的功能调控 | 第12-42页 |
| 第一章 前言 | 第12-16页 |
| 1.1 选题缘由 | 第12页 |
| 1.2 研究背景 | 第12-13页 |
| 1.3 研究意义 | 第13-14页 |
| 1.4 研究方法 | 第14页 |
| 1.5 研究内容 | 第14-16页 |
| 第二章 实验方法 | 第16-23页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第16页 |
| 2.2 NSCs的分离与培养 | 第16-17页 |
| 2.3 Lb L单细胞包被 | 第17页 |
| 2.4 细胞活性测试（Hoechst/ PI染色） | 第17-18页 |
| 2.5 MTT测试 | 第18页 |
| 2.6 荧光标记的明胶和藻朊酸盐的制备 | 第18页 |
| 2.7 荧光材料Lb L单细胞包被的荧光强度测试 | 第18-19页 |
| 2.8 透射电镜（Transmission electron microscopy，TEM） | 第19页 |
| 2.9 Zeta电位测试 | 第19页 |
| 2.10 扫描电镜（Scanning electron microscopy，SEM） | 第19-20页 |
| 2.11 免疫荧光染色 | 第20页 |
| 2.12 实时定量PCR | 第20页 |
| 2.13 WB检测 | 第20-21页 |
| 2.14 ELISA检测 | 第21-22页 |
| 2.15 统计分析 | 第22-23页 |
| 第三章 结果 | 第23-38页 |
| 3.1 Lb L单细胞包被的安全性测试 | 第23-24页 |
| 3.2 Lb L单细胞包被的表征 | 第24-28页 |
| 3.3 Lb L单细胞包被的形态观察 | 第28-29页 |
| 3.4 Lb L单细胞包被对于细胞的功能影响 | 第29-32页 |
| 3.5 Lb L单细胞包被可以作为药物释放的媒介 | 第32-34页 |
| 3.6 Lb L单细胞包被IGF-1 释放对于NSCs的影响 | 第34-38页 |
| 第四章 讨论 | 第38-42页 |
| 第二部分 层层自组装单细胞包被通透性的特点和应用 | 第42-66页 |
| 第一章 前言 | 第42-46页 |
| 1.1 选题缘由 | 第42页 |
| 1.2 研究背景 | 第42-44页 |
| 1.3 研究意义 | 第44页 |
| 1.4 研究方法 | 第44页 |
| 1.5 研究内容 | 第44-46页 |
| 第二章 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.1 材料与试剂。 | 第46页 |
| 2.2 Lb L单细胞包被 | 第46页 |
| 2.3 透射电镜 | 第46-47页 |
| 2.4 AFM | 第47页 |
| 2.5 荧光标记明胶的制备 | 第47页 |
| 2.6 FD通透性测试 | 第47页 |
| 2.7 免疫荧光染色 | 第47-48页 |
| 2.8 PLA | 第48页 |
| 2.9 免疫共沉淀和WB | 第48页 |
| 2.10 统计分析 | 第48-49页 |
| 第三章 结果 | 第49-63页 |
| 3.1 Lb L单细胞包被的生物相容性 | 第49-51页 |
| 3.2 Lb L单细胞包被的表征 | 第51-52页 |
| 3.3 Lb L单细胞包被的细胞表面形貌 | 第52-55页 |
| 3.4 Lb L单细胞包被对于FD分子的通透性 | 第55-58页 |
| 3.5 Lb L单细胞包被对于TNF-α 诱发凋亡的保护作用 | 第58-63页 |
| 第四章 讨论 | 第63-66页 |
| 全文总结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 文献综述 单细胞包被技术的研究进展 | 第74-130页 |
| 参考文献 | 第105-130页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第130-131页 |
| 致谢 | 第131页 |
