| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 神经干细胞的原代培养及GABA能神经元诱导分化 | 第14-24页 |
| 1.1 材料与方法 | 第15-16页 |
| 1.1.1 试剂及抗体 | 第15页 |
| 1.1.2 培养液 | 第15页 |
| 1.1.3 实验步骤 | 第15-16页 |
| 1.1.4 细胞染色鉴定 | 第16页 |
| 1.2 结果 | 第16-19页 |
| 1.2.1 神经干细胞原代培养 | 第16-17页 |
| 1.2.2 GABA能神经元诱导分化 | 第17-19页 |
| 1.3 讨论 | 第19-24页 |
| 1.3.1 GABA能神经元的诱导分化 | 第19-22页 |
| 1.3.2 Hes1基因 | 第22页 |
| 1.3.3 实验不足与展望 | 第22-24页 |
| 第二章 海水浸泡脑损伤大鼠模型的改进 | 第24-30页 |
| 2.1 模型改进特点 | 第24-26页 |
| 2.1.1 重物坠落伤模型改进 | 第24-25页 |
| 2.1.2 海水浸泡方式及时间改进 | 第25页 |
| 2.1.3 海水浸泡脑损伤造模步骤改进 | 第25页 |
| 2.1.4 海水浸泡脑损伤模型分组 | 第25-26页 |
| 2.2 结果 | 第26-27页 |
| 2.2.1 大鼠存活率 | 第26页 |
| 2.2.2 大鼠神经功能缺失情况 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-30页 |
| 2.3.1 撞针改进 | 第27-28页 |
| 2.3.2 海水浸泡方式 | 第28页 |
| 2.3.3 不足与展望 | 第28-30页 |
| 第三章 海水浸泡脑损伤大鼠的神经炎症反应 | 第30-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 实验动物及分组 | 第31页 |
| 3.1.2 海水配制 | 第31页 |
| 3.1.3 动物模型构建 | 第31页 |
| 3.1.4 脑组织固定,取材 | 第31-32页 |
| 3.1.5 HE及免疫组化染色 | 第32页 |
| 3.1.6 数据处理及统计学分析 | 第32页 |
| 3.2 结果 | 第32-35页 |
| 3.2.1 脑出血及脑水肿变化 | 第32-33页 |
| 3.2.2 损伤脑组织CD11b/c的表达 | 第33-34页 |
| 3.2.3 损伤脑组织CD68的表达 | 第34-35页 |
| 3.2.4 细胞计数及统计差异 | 第35页 |
| 3.3 讨论 | 第35-40页 |
| 3.3.1 海水浸泡脑损伤后炎性改变 | 第35-36页 |
| 3.3.2 小胶质细胞聚集活化的高峰期 | 第36-37页 |
| 3.3.3 CD11b/c和CD68表型的区别 | 第37-38页 |
| 3.3.4 小胶质细胞活化的利与弊 | 第38页 |
| 3.3.5 对细胞移植治疗应用的启示 | 第38-40页 |
| 第四章 细胞联合移植治疗动物实验初步研究 | 第40-50页 |
| 4.1 材料与方法 | 第40-44页 |
| 4.1.1 实验动物与分组 | 第40-41页 |
| 4.1.2 人神经干细胞及GABA能神经元细胞 | 第41页 |
| 4.1.3 试剂与抗体 | 第41页 |
| 4.1.4 行为学评估 | 第41-43页 |
| 4.1.5 实验步骤 | 第43页 |
| 4.1.6 切片染色 | 第43-44页 |
| 4.2 结果 | 第44-47页 |
| 4.2.1 移植细胞染色 | 第44-46页 |
| 4.2.2 行为学结果 | 第46-47页 |
| 4.3 讨论 | 第47-50页 |
| 4.3.1 细胞移植对神经功能损伤的修复 | 第47-48页 |
| 4.3.2 移植细胞存活率 | 第48页 |
| 4.3.3 细胞联合移植治疗 | 第48-49页 |
| 4.3.4 不足与展望 | 第49-50页 |
| 小结 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 中英文缩略词对照 | 第60-62页 |
| 攻读硕士期间成果 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |