| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 国内外双峰驼研究现状 | 第12-13页 |
| 1.2 CYP酶研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2.1 CYP酶概述 | 第13页 |
| 1.2.2 CYP酶与药物作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3 CYP酶的抑制反应 | 第14页 |
| 1.3 CYP酶活性研究 | 第14-15页 |
| 1.3.1 体内研究方法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 体外研究方法 | 第15页 |
| 1.4 CYP3A酶研究概述 | 第15-19页 |
| 1.4.1 CYP3A酶的生物学特性 | 第15页 |
| 1.4.2 CYP3A参与物质的代谢 | 第15-17页 |
| 1.4.3 CYP3A基因表达及其调控 | 第17页 |
| 1.4.4 CYP3A酶的抑制与诱导 | 第17-18页 |
| 1.4.5 CYP3A酶与药物相互作用 | 第18-19页 |
| 1.5 咪达唑仑 | 第19-20页 |
| 1.5.1 咪达唑仑的代谢 | 第19-20页 |
| 1.6 双峰驼CYP3A酶 | 第20-21页 |
| 1.6.1 CYP3A酶对于双峰驼潜在生物学意义 | 第20页 |
| 1.6.2 双峰驼CYP3A | 第20-21页 |
| 1.7 试验目的与意义 | 第21页 |
| 2 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 3 实验方法 | 第22-24页 |
| 3.1 分组给药与血样采集 | 第22页 |
| 3.2 标准品溶液和内标溶液的配制 | 第22页 |
| 3.3 血浆样品前处理 | 第22页 |
| 3.4 建立HPLC检测方法 | 第22页 |
| 3.5 方法学考察 | 第22-23页 |
| 3.5.1 绘制咪达唑仑标准曲线 | 第22-23页 |
| 3.5.2 相对回收率与绝对回收率 | 第23页 |
| 3.5.3 日内、日间精密度试验 | 第23页 |
| 3.6 咪达唑仑在双峰驼体内药代动力学特征研究 | 第23页 |
| 3.7 考察酶抑制剂伊曲康唑对双峰驼体内咪达唑仑药动学差异的影响 | 第23-24页 |
| 3.8 评价双峰驼CYP3A酶体内活性 | 第24页 |
| 3.9 数据处理 | 第24页 |
| 4 实验结果与分析 | 第24-30页 |
| 4.1 咪达唑仑的标准曲线 | 第24页 |
| 4.2 相对回收率和绝对回收率 | 第24-25页 |
| 4.3 日内精密度与日间精密度 | 第25页 |
| 4.4 HPLC专属性考察 | 第25-27页 |
| 4.5 咪达唑仑在双峰驼血浆中药-时曲线 | 第27-28页 |
| 4.6 咪达唑仑在双峰驼血浆中药代动力学研究 | 第28页 |
| 4.7 抑制剂伊曲康唑对双峰驼体内注射咪达唑仑药动学差异的影响 | 第28-29页 |
| 4.8 评价双峰驼CYP3A酶体内活性 | 第29-30页 |
| 5 讨论 | 第30-35页 |
| 5.1 HPLC检测方法建立 | 第30-33页 |
| 5.1.1 色谱条件确定 | 第30-31页 |
| 5.1.2 样品处理 | 第31-32页 |
| 5.1.3 HPLC检测双峰驼血浆咪达唑仑方法学研究 | 第32-33页 |
| 5.2 采血时间的确定 | 第33页 |
| 5.3 咪达唑仑在双峰驼体内药代动力学研究 | 第33-34页 |
| 5.4 CYP3A抑制剂对于双峰驼体内MDZ药动学影响 | 第34-35页 |
| 6 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-46页 |
| 作者简介 | 第46页 |
