| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1. 前言 | 第9-22页 |
| 1.1 生物胺 | 第9-13页 |
| 1.1.0 生物胺概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 生物胺的活性和毒性 | 第10-11页 |
| 1.1.2 生物胺与食品安全 | 第11-12页 |
| 1.1.3 影响生物胺形成的因素 | 第12页 |
| 1.1.4 存在生物胺的食品 | 第12-13页 |
| 1.2 食品中生物胺的样品前处理技术 | 第13-17页 |
| 1.2.1 生物胺的提取 | 第13-14页 |
| 1.2.2 生物胺样品的净化 | 第14-15页 |
| 1.2.3 生物胺的衍生 | 第15-17页 |
| 1.3 生物胺检测方法的概述 | 第17-20页 |
| 1.3.1 高效液相色谱 | 第17-18页 |
| 1.3.2 气相色谱 | 第18页 |
| 1.3.3 薄层色谱 | 第18页 |
| 1.3.4 离子色谱法 | 第18-19页 |
| 1.3.5 电泳 | 第19页 |
| 1.3.6 酶联免疫法 | 第19-20页 |
| 1.4 研究的目的和意义 | 第20页 |
| 1.5 研究的主要内容 | 第20-22页 |
| 2. 材料与方法 | 第22-29页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第22-24页 |
| 2.1.1 生物胺标品 | 第22页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.4 实验样品的准备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-29页 |
| 2.2.1 生物胺的检测方法 | 第24-27页 |
| 2.2.2 生物胺含量的变化 | 第27-29页 |
| 3. 结果与讨论 | 第29-72页 |
| 3.1 在线固相萃取-毛细管液相色谱联用条件的优化 | 第29-47页 |
| 3.1.1 毛细管液相色谱分析柱条件的优化 | 第29-38页 |
| 3.1.2 On-line SPE条件的优化 | 第38-43页 |
| 3.1.3 样品检测 | 第43-47页 |
| 3.2 常规高效液相色谱检测生物胺 | 第47-65页 |
| 3.2.1 常规高效液相色谱分离条件的优化 | 第47-55页 |
| 3.2.2 固相萃取条件的优化 | 第55-65页 |
| 3.3 两种检测方法的对比 | 第65页 |
| 3.3.1 样品用量、试剂消耗和成本方面的比较 | 第65页 |
| 3.3.2 两种检测方法灵敏度方面的比较 | 第65页 |
| 3.3.3 两种检测方法精密度方面的比较 | 第65页 |
| 3.4 不同贮藏条件下生物胺含量的变化 | 第65-72页 |
| 3.4.1 在常温下肉中生物胺含量的变化 | 第65-67页 |
| 3.4.2 在4℃储藏下肉中生物胺含量的变化 | 第67-69页 |
| 3.4.3 在-20℃储藏下肉中生物胺含量的变化 | 第69-72页 |
| 4. 结论 | 第72-73页 |
| 5. 展望 | 第73-74页 |
| 6. 参考文献 | 第74-81页 |
| 7. 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第81-82页 |
| 8 致谢 | 第82页 |