| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第9-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-23页 |
| ·日本海马的形态特征及分布 | 第14页 |
| ·海马的经济价值及药用 | 第14-15页 |
| ·海马的繁殖和养殖 | 第15-16页 |
| ·常见鱼类致病菌 | 第16页 |
| ·国内外海马病原学研究进展 | 第16-20页 |
| ·细菌性疾病 | 第16-18页 |
| ·弧菌病 | 第16-17页 |
| ·分枝杆菌病 | 第17-18页 |
| ·假单胞杆菌病 | 第18页 |
| ·真菌性疾病 | 第18页 |
| ·寄生虫病 | 第18-20页 |
| ·纤毛虫病 | 第18-19页 |
| ·微孢子虫病 | 第19页 |
| ·黏孢子虫病 | 第19-20页 |
| ·吸虫病 | 第20页 |
| ·其它寄生虫病 | 第20页 |
| ·病毒性疾病 | 第20页 |
| ·海马组织学研究进展 | 第20-21页 |
| ·防治 | 第21-22页 |
| ·本试验研究的目的与意义 | 第22-23页 |
| 第二章 养殖日本海马溃疡症病原菌的分离鉴定及致病性研究 | 第23-33页 |
| ·材料与方法 | 第23-25页 |
| ·试验材料 | 第23页 |
| ·试验试剂 | 第23页 |
| ·病原菌的分离、纯化 | 第23页 |
| ·病原菌的透射电镜观察方法 | 第23-24页 |
| ·生理生化特征鉴定 | 第24页 |
| ·16S rDNA 的基因扩增与序列的分析 | 第24页 |
| ·PCR 模板的制备 | 第24页 |
| ·16S rDNA 序列扩增与序列分析 | 第24页 |
| ·药敏试验方法 | 第24页 |
| ·人工感染试验方法 | 第24-25页 |
| ·腹腔注射试验方法 | 第24页 |
| ·浸泡感染试验方法 | 第24-25页 |
| ·菌株 HM16 对小白鼠的致病性 | 第25页 |
| ·灭活菌体的制备及小白鼠血清凝集试验 | 第25页 |
| ·灭活菌体的制备及安全检测 | 第25页 |
| ·小白鼠血清凝集试验 | 第25页 |
| ·试验结果 | 第25-31页 |
| ·试验室养殖日本海马的发病过程、症状及其解剖观察结果 | 第25页 |
| ·形态特征观察结果 | 第25-26页 |
| ·生长条件 | 第26页 |
| ·生理生化特征鉴定结果 | 第26-27页 |
| ·药敏试验结果 | 第27-28页 |
| ·16S rDNA 序列系统发育分析结果 | 第28-29页 |
| ·人工感染试验结果 | 第29-30页 |
| ·菌株 HM16 对小白鼠的致病性分析结果 | 第30-31页 |
| ·菌株 HM16 灭活菌体的制备及小白鼠血清凝集试验结果 | 第31页 |
| ·讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 养殖日本海马肠炎病病原菌的分离鉴定及致病性研究 | 第33-42页 |
| ·材料与方法 | 第33-35页 |
| ·试验材料 | 第33页 |
| ·试验试剂 | 第33页 |
| ·病原菌的分离、纯化 | 第33页 |
| ·病原菌的透射电镜观察方法 | 第33页 |
| ·生理生化特征鉴定 | 第33页 |
| ·16S rDNA 的扩增与序列分析 | 第33页 |
| ·药敏试验方法 | 第33-34页 |
| ·人工感染试验方法 | 第34页 |
| ·腹腔注射试验方法 | 第34页 |
| ·浸泡感染试验方法 | 第34页 |
| ·菌株 HC2 对小白鼠的致病性 | 第34页 |
| ·灭活菌体的制备及小白鼠血清凝集试验 | 第34-35页 |
| ·灭活菌体的制备及安全检测 | 第34页 |
| ·小白鼠血清凝集试验 | 第34-35页 |
| ·试验结果 | 第35-39页 |
| ·试验室养殖日本海马的发病过程、症状及解剖观察结果 | 第35页 |
| ·形态特征观察结果 | 第35页 |
| ·生长条件 | 第35-36页 |
| ·生理生化特征鉴定结果 | 第36页 |
| ·药敏试验结果 | 第36-37页 |
| ·16S rDNA 序列系统发育分析结果 | 第37-38页 |
| ·人工感染试验结果 | 第38-39页 |
| ·菌株 HC2 对小白鼠的致病性分析 | 第39页 |
| ·HC2 菌株灭活菌体可靠性及小白鼠血清凝集试验结果 | 第39页 |
| ·讨论 | 第39-42页 |
| 第四章 日本海马肠炎病病原拮抗菌的分离、鉴定及发酵条件优化 | 第42-53页 |
| ·材料和方法 | 第42-44页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·供试病原菌和日本海马材料 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42页 |
| ·日本海马肠道菌的分离、纯化以及拮抗菌的筛选 | 第42-43页 |
| ·日本海马肠道菌的分离和纯化 | 第42页 |
| ·拮抗菌的筛选 | 第42-43页 |
| ·拮抗菌 HS17 的鉴定 | 第43页 |
| ·生理生化特征鉴定 | 第43页 |
| ·16S rDNA 的基因扩增与序列的分析 | 第43页 |
| ·抑菌活性物质热稳定性检测 | 第43页 |
| ·发酵条件的优化 | 第43-44页 |
| ·不同碳源、氮源和磷酸盐对菌株 HS17 生物量的影响 | 第43页 |
| ·最佳营养条件的正交试验 | 第43-44页 |
| ·发酵条件的优化 | 第44页 |
| ·试验结果 | 第44-52页 |
| ·拮抗菌的筛选结果 | 第44-45页 |
| ·拮抗菌 HS17 的鉴定结果 | 第45-48页 |
| ·拮抗菌的形态特征 | 第45页 |
| ·拮抗菌生长条件和生物量的测定结果 | 第45-46页 |
| ·生理生化鉴定结果 | 第46页 |
| ·16S rDNA 序列系统发育分析结果 | 第46-47页 |
| ·抑菌活性物质热稳定性检测结果 | 第47-48页 |
| ·菌株 HS17 发酵条件的优化结果 | 第48-52页 |
| ·不同碳源、氮源和磷酸盐对菌株 HS17 生物量的影响结果 | 第48-49页 |
| ·菌株 HS17 正交试验结果 | 第49-50页 |
| ·发酵条件的优化结果 | 第50-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| 第五章 海马病原组织学研究 | 第53-64页 |
| ·材料与方法 | 第53-54页 |
| ·材料 | 第53页 |
| ·取材方法 | 第53页 |
| ·主要试验试剂与仪器 | 第53页 |
| ·试验试剂的配制 | 第53-54页 |
| ·HE 染色方法 | 第54页 |
| ·日本海马血液瑞氏染色方法 | 第54页 |
| ·结果 | 第54-62页 |
| ·皮肤的组织学鉴定结果 | 第54-55页 |
| ·尾部组织学鉴定结果 | 第55-57页 |
| ·皮肤色素细胞的变化鉴定结果 | 第57-61页 |
| ·躯干部色素细胞变化鉴定结果 | 第58-59页 |
| ·尾部色素细胞变化鉴定结果 | 第59-60页 |
| ·鳃部、肝脏、肾脏和肠道组织切片结果 | 第60-61页 |
| ·血细胞的分类研究结果 | 第61-62页 |
| ·血液的瑞氏染色观察与流式细胞术分析结果结果 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士期间的科研成果 | 第76页 |
