| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 专业词汇中英文对照 | 第10-12页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 引言 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-38页 |
| ·红细胞分化和发育的研究 | 第16-28页 |
| ·红系分化概述 | 第16-17页 |
| ·转录因子在红细胞分化和发育过程中的作用 | 第17-23页 |
| ·miRNA在红细胞分化和发育过程中的作用 | 第23-26页 |
| ·LCR在调控红细胞的分化和发育中的作用 | 第26-27页 |
| ·红细胞分化和发育异常引起的疾病及治疗 | 第27-28页 |
| ·FOXO3的研究进展 | 第28-35页 |
| ·FOXO亚族 | 第28-34页 |
| ·FOXO3在红细胞分化和发育过程的作用 | 第34-35页 |
| ·FOXO3的其他生物学功能 | 第35页 |
| ·转录组研究在红系分化和发育中的优势 | 第35-38页 |
| 第二章 材料和方法 | 第38-56页 |
| ·细胞样品 | 第38页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第38-40页 |
| ·实验试剂和耗材 | 第38-39页 |
| ·试剂盒 | 第39页 |
| ·常用溶液和培养基 | 第39-40页 |
| ·实验仪器 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-54页 |
| ·基因过表达载体的构建 | 第40-42页 |
| ·基因敲除载体的构建 | 第42-44页 |
| ·化学转染和电转染细胞 | 第44-45页 |
| ·免疫印迹技术(Western blot) | 第45-46页 |
| ·实时定量PCR(Quantitative Real-time PCR) | 第46-48页 |
| ·流式细胞仪分选细胞 | 第48-49页 |
| ·FOXO3目标蛋白的检测 | 第49-50页 |
| ·作用于FOXO3的miRNA的预测和检测 | 第50-52页 |
| ·定点突变 | 第52-53页 |
| ·细胞培养 | 第53页 |
| ·斑马鱼的饲养、Morpholinos、原位杂交和O-邻联茴香胺染色等 | 第53-54页 |
| ·统计学分析 | 第54页 |
| ·高通量测序和分析 | 第54-56页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第56-86页 |
| ·生物信息分析发现FOXO3A可能参与红系早期分化 | 第56-60页 |
| ·mRNA-Seq数据分析发现FOXO3可能参与红细胞分化 | 第56-58页 |
| ·DNase-Seq和ChIP-Seq数据分析发现FOXO3的基因结构在红细胞分化发育早期具有显著特点 | 第58-60页 |
| ·FOXO3在非红系细胞中增强珠蛋白的表达 | 第60-62页 |
| ·敲除FOXO3能够抑制红系的分化 | 第62-67页 |
| ·敲除FOXO3能够抑制珠蛋白的表达 | 第62-65页 |
| ·敲除FOXO3可以抑制TF-1向红系方向分化 | 第65-67页 |
| ·FOXO3的作用目标蛋白 | 第67-77页 |
| ·IPA分析FOXO3参与红系分化的调控网络 | 第67-69页 |
| ·过表达或敲除FOXO3后能够影响BTG1和BCL2L1的表达 | 第69-71页 |
| ·FOXO3作用于BTG1基因上游 | 第71-74页 |
| ·敲除BTG1能够抑制珠蛋白的表达 | 第74-77页 |
| ·miR-200b抑制FOXO3的表达 | 第77-81页 |
| ·预测作用于FOXO3的miRNA | 第77-78页 |
| ·检测miRNA与FOXO3 3'UTR的相互作用 | 第78-81页 |
| ·Foxo3b对斑马鱼的红系分化起着重要的作用 | 第81-86页 |
| 第四章 结论 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-98页 |
| 附录 | 第98-112页 |
| 作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第112-113页 |
