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碳离子辐照引起的线粒体DNA损伤突变及相关方法学研究

致谢第1-6页
摘要第6-8页
ABSTRACT第8-14页
第一章 引言第14-19页
   ·概述第14-15页
   ·线粒体 DNA 结构与功能第15-17页
     ·线粒体 DNA 概述第15-16页
     ·正常线粒体的结构和功能第16-17页
   ·电离辐射与线粒体 DNA 损伤第17-19页
第二章 电离辐射引起的线粒体 DNA 损伤定量分析第19-32页
   ·引言第19-20页
   ·材料与试剂第20-21页
     ·实验材料第20-21页
     ·主要仪器第21页
   ·实验方法和步骤第21-25页
     ·细胞培养第21-22页
     ·X 射线辐照条件第22页
     ·碳重离子辐照条件第22页
     ·DNA 提取第22-23页
     ·实时荧光定量 PCR 检测线粒体 DNA 5464-7287 编码区损伤第23-24页
     ·线粒体 DNA D310 区点突变检测第24-25页
     ·线粒体 DNA4977 大片段缺失检测第25页
     ·统计学分析第25页
   ·结果第25-29页
     ·加入维生素 C 但未辐照的细胞线粒体 5464-7287 编码区对比第25-26页
     ·12C6+离子束辐照后 5464-7287 区的损伤情况第26-27页
     ·碳重离子与 X 射线生物学效应第27-28页
     ·线粒体 D310 区点突变检测第28页
     ·线粒体 DNA4977 缺失定量检测第28-29页
   ·讨论第29-32页
第三章 硅碳量子点(SiCDs)在活细胞及活体染色中的应用研究第32-48页
   ·引言第32-33页
   ·实验材料与仪器第33-34页
     ·实验材料第33页
     ·主要试剂第33页
     ·主要仪器第33-34页
   ·实验方法和步骤第34-37页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞 MTT 检测第34-35页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内超氧化物歧化酶(SOD)含量测定第35页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内丙二醛(MDA)含量测定第35页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内活性氧(ROS)水平测定第35-36页
     ·SiCDs 染色 24h 后斑马鱼存活率检测第36页
     ·SiCDs 染色 24h 后斑马鱼 SOD, MDA 及 ROS 含量测定第36页
     ·SiCDs 耐光性比较第36页
     ·SiCDs 对 HepG2 细胞的染色部位及荧光成像第36-37页
     ·SiCDs 对斑马鱼的荧光成像第37页
     ·统计学分析第37页
   ·结果第37-46页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 相对活力检测第37-38页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内超氧化物歧化酶(SOD)的含量第38-39页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内丙二醛(MDA)含量第39-40页
     ·SiCDs 染色 24h 后 HepG2 细胞内活性氧(ROS)含量第40-41页
     ·SiCDs 染色 24h 斑马鱼胚胎存活率检测第41页
     ·SiCDs 染色 24h 斑马鱼胚胎的 SOD,MDA 及 ROS 含量第41-43页
     ·SiCDs 的耐光性结果第43-44页
     ·SiCDs 对 HepG2 细胞的染色部位及荧光成像结果第44-45页
     ·SiCDs 对斑马鱼的荧光成像结果第45-46页
   ·讨论第46-48页
第四章 Mitocondros 应用于线粒体活性氧检测的初步研究第48-55页
   ·引言第48页
   ·实验材料与仪器第48-50页
     ·实验材料第48-49页
     ·主要试剂第49页
     ·主要仪器第49-50页
   ·实验方法和步骤第50-51页
     ·Mitocondros 染色 24h 后 HepG2 细胞 MTT 检测第50页
     ·Mitocondros 激发及发射光谱测定第50-51页
     ·统计学分析第51页
   ·结果第51-53页
     ·Mitocondros 染色 24h 后 HepG2 相对活力检测第51页
     ·Mitocondros 的荧光强度第51-53页
   ·讨论第53-55页
第五章 全文总结第55-57页
参考文献第57-65页
作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果第65页

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