| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-22页 |
| ·引言 | 第15页 |
| ·细脚拟青霉的概述 | 第15-18页 |
| ·细脚拟青霉药理作用 | 第17-18页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第17页 |
| ·抗菌作用 | 第17页 |
| ·抗氧化作用 | 第17页 |
| ·免疫调节功能 | 第17-18页 |
| ·细脚拟青霉培养方式的研究现状 | 第18-21页 |
| ·细脚拟青霉固态培养研究 | 第18页 |
| ·细脚拟青霉虫体培养研究 | 第18页 |
| ·细脚拟青霉液态培养研究 | 第18-19页 |
| ·细脚拟青霉所含活性物质的研究 | 第19-21页 |
| ·细脚拟青霉多糖的研究 | 第19页 |
| ·细脚拟青霉多糖功能的研究 | 第19-20页 |
| ·细脚拟青霉多糖结构的研究 | 第20页 |
| ·虫草真菌中活性抗氧化酶SOD的研究 | 第20-21页 |
| ·蚕蛹资源的研究现状 | 第21页 |
| ·本论文的研究意义及主要内容 | 第21-22页 |
| 第2章 细脚拟青霉培养及形态学观察 | 第22-29页 |
| ·实验材料 | 第22-24页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·试验菌株 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23-24页 |
| ·活化培养基 | 第23-24页 |
| ·种子培养基 | 第24页 |
| ·鉴定培养基 | 第24页 |
| ·固体培养基 | 第24页 |
| ·液体培养基 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-25页 |
| ·菌种活化 | 第24页 |
| ·平板培养 | 第24页 |
| ·固体培养 | 第24页 |
| ·种子液培养 | 第24-25页 |
| ·液态摇瓶培养 | 第25页 |
| ·电子显微镜观察 | 第25页 |
| ·液态培养生物量测定方法 | 第25页 |
| ·结果与讨论 | 第25-28页 |
| ·形态学鉴观察结果 | 第25-27页 |
| ·固态培养结果 | 第27页 |
| ·液态培养结果 | 第27-28页 |
| ·本章小结 | 第28-29页 |
| 第3章 细脚拟青霉冻干菌丝SOD及粗多糖的测定 | 第29-37页 |
| ·实验材料 | 第29-30页 |
| ·主要实验设备 | 第29-30页 |
| ·主要试剂 | 第30页 |
| ·供试材料 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-34页 |
| ·细脚拟青霉SOD酶活含量的测定 | 第30-33页 |
| ·邻苯三酚自氧化法测定SOD酶活含量 | 第30-31页 |
| ·试剂配制 | 第31-33页 |
| ·细脚拟青霉菌丝体胞内多糖含量的测定 | 第33页 |
| ·蒽酮-硫酸法 | 第33页 |
| ·葡萄糖标准曲线制作 | 第33页 |
| ·细脚拟青霉多糖的提取 | 第33页 |
| ·测定方法的科学性评价 | 第33-34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-35页 |
| ·细脚拟青霉sod酶活含量的活性 | 第34页 |
| ·培养基成分细脚拟青霉SOD酶活含量的活性 | 第34-35页 |
| ·细脚拟青霉菌丝体胞内多糖含量测定结果 | 第35页 |
| ·精确度测试结果 | 第35页 |
| ·加样回收率结果 | 第35页 |
| ·本章小结 | 第35-37页 |
| 第4章 细脚拟青霉培养条件优化 | 第37-48页 |
| ·主要实验材料 | 第37-39页 |
| ·主要实验设备 | 第37-38页 |
| ·主要试剂 | 第38页 |
| ·菌种 | 第38页 |
| ·培养基 | 第38-39页 |
| ·实验方法 | 第39页 |
| ·培养方法 | 第39页 |
| ·种子液培养 | 第39页 |
| ·初始培养条件 | 第39页 |
| ·细脚拟青霉生物量测定方法 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-47页 |
| ·液态培养最佳培养时间的选择 | 第39-40页 |
| ·培养基单因素实验 | 第40-42页 |
| ·碳源的选择对细脚拟青霉菌丝体产量的影响 | 第40页 |
| ·碳源添加量的选择对细脚拟青霉菌丝体产量的影响 | 第40-41页 |
| ·氮源的选择对细脚拟青霉菌丝体产量的影响 | 第41页 |
| ·碳氮比的选择对细脚拟青霉菌丝体产量的影响 | 第41-42页 |
| ·培养条件优化 | 第42-45页 |
| ·细脚拟青霉液态培养最佳接种量的选择 | 第42-43页 |
| ·细脚拟青霉液态培养初始pH值的选择 | 第43页 |
| ·细脚拟青霉液态培养装液量的选择 | 第43-44页 |
| ·细脚拟青霉液态培养摇床转速的选择 | 第44页 |
| ·细脚拟青霉液态培养培养温度的选择 | 第44-45页 |
| ·正交实验结果分析 | 第45-46页 |
| ·细脚拟青霉最佳液态培养方案验证试验 | 第46-47页 |
| ·本章小结 | 第47-48页 |
| 第5章 响应面法优化细脚拟青霉菌株产多糖的条件 | 第48-56页 |
| ·实验材料 | 第48-49页 |
| ·主要实验仪器 | 第48-49页 |
| ·主要试剂 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-50页 |
| ·响应面法优化细脚拟青霉产多糖添加结果与分析 | 第50-55页 |
| ·Plackett-Burman实验设计确定主要影响因素 | 第50-51页 |
| ·最陡爬坡实验 | 第51-52页 |
| ·响应面优化实验 | 第52-54页 |
| ·响应面分析及最佳培养条件确定 | 第54-55页 |
| ·验证性实验 | 第55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 第6章 细脚拟青霉多糖提取及分离纯化 | 第56-66页 |
| ·实验材料 | 第56-57页 |
| ·主要实验设备 | 第56-57页 |
| ·主要试剂 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-59页 |
| ·细脚拟青霉粗多糖提取 | 第57-58页 |
| ·多糖含量的测定 | 第58页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第58页 |
| ·蛋白质的去除方法 | 第58页 |
| ·细脚拟青霉分离步骤 | 第58页 |
| ·DEAE纤维素柱层析 | 第58-59页 |
| ·DEAE纤维素柱装柱与平衡 | 第58页 |
| ·上样 | 第58-59页 |
| ·洗脱与收集 | 第59页 |
| ·组分收集及透析脱盐 | 第59页 |
| ·Sephadex G-100凝胶过滤 | 第59页 |
| ·Sephadex G-100溶胀 | 第59页 |
| ·装柱 | 第59页 |
| ·洗脱与收集 | 第59页 |
| ·结果与讨论 | 第59-65页 |
| ·细脚拟青霉粗多糖提取条件选择 | 第59-61页 |
| ·提取时间对多糖提取率的影响 | 第59-60页 |
| ·料液比对多糖提取率的影响 | 第60页 |
| ·提取温度对多糖提取率的影响 | 第60-61页 |
| ·提取条件的选择 | 第61页 |
| ·聚酰胺法除蛋白 | 第61-62页 |
| ·聚酰胺用量的选择 | 第61-62页 |
| ·聚酰胺处理时间的选择 | 第62页 |
| ·DEAE纤维素层析条件的确定 | 第62-64页 |
| ·除盐 | 第64页 |
| ·细脚拟青霉多糖分离结果 | 第64-65页 |
| ·本章小结 | 第65-66页 |
| 第7章 高效毛细管电泳测定细脚拟青霉多糖组分 | 第66-74页 |
| ·实验材料 | 第66-67页 |
| ·主要实验设备 | 第66-67页 |
| ·主要试剂 | 第67页 |
| ·实验方法 | 第67-68页 |
| ·标准单糖衍生化及标准溶液的配制 | 第67-68页 |
| ·混合单糖标准品的配制 | 第67页 |
| ·PMP衍生试剂的配制 | 第67页 |
| ·混合单糖衍生化方法 | 第67-68页 |
| ·细脚拟青霉多糖水解及衍生化 | 第68页 |
| ·毛细管电泳的分析条件 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-72页 |
| ·毛细管电泳的分析条件的选择 | 第68-70页 |
| ·检测波长的选择 | 第68页 |
| ·分离电压的选择 | 第68页 |
| ·缓冲液浓度的选择 | 第68-69页 |
| ·缓冲液pH的选择 | 第69页 |
| ·混合单糖样品毛细管电泳图 | 第69-70页 |
| ·线性关系的考察 | 第70页 |
| ·精密度的考察 | 第70页 |
| ·细脚拟青霉多糖组分分析结果 | 第70-72页 |
| ·本章小结 | 第72-74页 |
| 第8章 结论与展望 | 第74-76页 |
| ·全文结论 | 第74-75页 |
| ·展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-85页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |