| 符号说明 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-30页 |
| ·植物根系的生理功能 | 第12页 |
| ·模式植物拟南芥的根系 | 第12-14页 |
| ·影响植物根系发育的主要因素 | 第14页 |
| ·植物激素生长素的研究现状 | 第14-25页 |
| ·生长素的合成及代谢 | 第15-17页 |
| ·非依赖于色氨酸（Trp）的生长素合成途径 | 第15页 |
| ·依赖于色氨酸（Trp）的生长素合成途径 | 第15-17页 |
| ·生长素的代谢 | 第17页 |
| ·生长素的运输 | 第17-22页 |
| ·生长素的长距离-快速运输方式 | 第18页 |
| ·生长素的极性运输方式 | 第18-22页 |
| ·生长素的信号转导 | 第22-25页 |
| ·细胞核内的生长素信号转导 | 第22-23页 |
| ·ABP1 介导的生长素快速响应 | 第23-25页 |
| ·生长素与根发育的关系 | 第25-29页 |
| ·生长素自身在根发育中的作用 | 第25-26页 |
| ·生长素与其他植物激素互作共同调控根的发育 | 第26-28页 |
| ·生长素-PLTs 途径在根发育的作用 | 第28-29页 |
| ·本实验的目的意义 | 第29-30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-41页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·菌株与质粒 | 第30页 |
| ·酶与各种生化试剂 | 第30页 |
| ·引物 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-41页 |
| ·植物基因组的提取与纯化 | 第31-32页 |
| ·植物基因组的提取 | 第31页 |
| ·植物基因组的纯化 | 第31-32页 |
| ·载体构建 | 第32-34页 |
| ·PCR 扩增 | 第32页 |
| ·连接反应 | 第32-33页 |
| ·酶切 | 第33页 |
| ·凝胶回收（全式金回收试剂盒） | 第33-34页 |
| ·超表达 AtASR 表达载体的构建 | 第34页 |
| ·启动子驱动 GUS 报告基因表达载体的构建 | 第34页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第34-35页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第34页 |
| ·大肠杆菌细胞的转化 | 第34-35页 |
| ·大肠杆菌中质粒的提取 | 第35-36页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第36页 |
| ·根癌农杆菌 GV3101 感受态细胞的制备 | 第36页 |
| ·冻融法转化农杆菌细胞 | 第36页 |
| ·拟南芥的转化及转基因拟南芥的鉴定 | 第36-37页 |
| ·拟南芥的转化 | 第36-37页 |
| ·转基因拟南芥的鉴定 | 第37页 |
| ·RNA 的提取纯化与反转录 | 第37-38页 |
| ·TRIZOL 法提取 RNA | 第37-38页 |
| ·RNA 的纯化 | 第38页 |
| ·RNA 中基因组 DNA 的去除 | 第38页 |
| ·RNA 的反转录 | 第38页 |
| ·实时定量 PCR | 第38-39页 |
| ·转基因植物 GUS 组织化学染色分析 | 第39-40页 |
| ·拟南芥的有性杂交 | 第40-41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-52页 |
| ·AtASR 的表达模式分析 | 第41-42页 |
| ·AtASR 的诱导表达模式分析 | 第42页 |
| ·AtASR 的功能鉴定 | 第42-45页 |
| ·AtASR 超表达植株的获得 | 第42-44页 |
| ·AtASR 超表达植株的表型鉴定 | 第44-45页 |
| ·AtASR 超表达植株主根生长受抑制的机理分析 | 第45-48页 |
| ·AtASR 超表达植株主根根尖分生区减小 | 第45-47页 |
| ·AtASR 超表达植株主根根尖干细胞活性降低 | 第47-48页 |
| ·AtASR 超表达植株主根变短与生长素之间的关系 | 第48-51页 |
| ·AtASR 超表达植株主根根尖生长素的积累量减少 | 第48-49页 |
| ·AtASR 超表达降低了根部生长素合成相关基因的表达 | 第49-51页 |
| ·外源施加生长素很大程度减小 AtASR 超表达植株主根生长的缺陷 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第68页 |
