| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一部分 CCK-8 法检测 AS2O3作用 KASUMI-1 细胞株细胞增殖率 | 第13-19页 |
| ·实验材料 | 第13-14页 |
| ·主要实验仪器及设备 | 第13页 |
| ·细胞株及试剂 | 第13-14页 |
| ·主要试剂配制 | 第14页 |
| ·实验方法 | 第14-15页 |
| ·Kasumi-1 细胞的常规复苏，培养，传代，冻存 | 第14页 |
| ·细胞生长抑制率的检测 | 第14-15页 |
| ·统计学方法 | 第15页 |
| ·结果 | 第15-16页 |
| ·讨论 | 第16-17页 |
| 参考文献 | 第17页 |
| 结论 | 第17-19页 |
| 第二部分 脂质体介导法转染 KASUMI-1 细胞株转染条件的优化 | 第19-33页 |
| ·材料 | 第20-22页 |
| ·实验仪器和设备 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20-22页 |
| ·试剂配制 | 第22页 |
| ·试验方法 | 第22-27页 |
| ·siRNA 的转染 | 第22-23页 |
| ·蛋白质的提取和制备 | 第23-24页 |
| ·Western Blot 检测 TAk1siRNA 转染 kasumi-1 细胞前后，TAK1 的表达 | 第24-25页 |
| ·Trizol 法提取 kasumi-1 细胞 RNA | 第25页 |
| ·cDNA 的合成 | 第25-26页 |
| ·引物设计 | 第26页 |
| ·RT-PCR 检测 kasumi-1 细胞 TAK1 基因的表达 | 第26-27页 |
| ·统计学方法 | 第27页 |
| ·结果 | 第27-30页 |
| ·有无血清对转染效率的影响 | 第27页 |
| ·转染时间对转染效率的影响 | 第27页 |
| ·Lipofectamine2000 量对转染效率的影响 | 第27-28页 |
| ·Si RNA 量对转染效率的影响 | 第28页 |
| ·不同 siRNA 转染后 TAK1 在 mRNA 上的表达量 | 第28-29页 |
| ·不同 siRNA 转染后 TAK1 在蛋白上的表达量 | 第29-30页 |
| ·统计学方法 | 第30页 |
| ·讨论 | 第30-32页 |
| 参考文献 | 第32页 |
| 结论 | 第32-33页 |
| 第三部分 封闭 TAK1 基因对加强三氧化二砷促 KASUMI-1 细胞凋亡的实验研究 | 第33-45页 |
| ·材料 | 第33-35页 |
| ·主要仪器 | 第33-34页 |
| ·试剂 | 第34页 |
| ·主要试剂的配制 | 第34-35页 |
| ·试验方法 | 第35-37页 |
| ·光学显微镜下观察凋亡小体 | 第35页 |
| ·AnnexinV-FITC，PI 双染检测细胞凋亡率 | 第35-36页 |
| ·甲基纤维素半固体培养观察克隆形成率 | 第36-37页 |
| ·统计学方法 | 第37页 |
| ·结果 | 第37-40页 |
| ·凋亡小体形态学结果 | 第37-38页 |
| ·不同处理条件下，kasumi-1 细胞凋亡率 | 第38-39页 |
| ·不同处理条件下，kasumi-1 细胞集落形成率 | 第39页 |
| ·不同处理条件下，Western Blot 检测 TAK1 及下游传导信号 P-JNK 的表达 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-43页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 综述 | 第45-57页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 英文缩写词 | 第57-58页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
