| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-28页 |
| ·自噬在植物抵御生物和非生物胁迫中起到作用 | 第13-19页 |
| ·自噬的分子机制 | 第13-15页 |
| ·自噬的生物学功能 | 第15-17页 |
| ·自噬在非生物胁迫中的功能 | 第15-16页 |
| ·自噬在生物胁迫中的功能 | 第16-17页 |
| ·自噬在生长发育中的功能 | 第17页 |
| ·选择性自噬的功能和作用机制 | 第17-19页 |
| ·WRKY33可以调控植物对逆境胁迫响应机制 | 第19-23页 |
| ·WRKY蛋白家族的结构和功能 | 第19-20页 |
| ·WRKY33调控植物抵抗非生物胁迫 | 第20-22页 |
| ·WRKY33调控植物抵抗生物胁迫 | 第22-23页 |
| ·植物对高温胁迫的防御机制 | 第23-26页 |
| ·高温对植物的伤害 | 第23-24页 |
| ·植物对高温的响应机制 | 第24-26页 |
| ·本文研究的目的及意义 | 第26-28页 |
| 2 自噬在番茄抵御高温中起重要作用 | 第28-38页 |
| 摘要 | 第28-29页 |
| ·材料与方法 | 第29-31页 |
| ·植物材料与处理 | 第29页 |
| ·光合气体交换和叶绿素荧 | 第29-30页 |
| ·电导率(EL)测定 | 第30页 |
| ·构建VIGS沉默载体 | 第30-31页 |
| ·番茄幼苗VIGS侵染方法 | 第31页 |
| ·结果 | 第31-37页 |
| ·番茄在热击胁迫下自噬基因上调表达 | 第31-32页 |
| ·构建番茄ATG5和ATG7沉默植株 | 第32-33页 |
| ·沉默植株的抗热能力下降 | 第33-34页 |
| ·沉默植株的PSⅡ更易受到高温损伤 | 第34-36页 |
| ·高温对电导率(EL)的影响 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| 3 选择性自噬是番茄抵抗热击的一种关键自噬方式 | 第38-52页 |
| 摘要 | 第38-39页 |
| ·材料与方法 | 第39-42页 |
| ·材料培养和处理 | 第39页 |
| ·叶绿素荧光成像分析和光合系统气体交换测定 | 第39页 |
| ·电导率(EL)测定 | 第39页 |
| ·构建VIGS沉默载体及转化 | 第39-40页 |
| ·总RNA提取和cDNA合成 | 第40-41页 |
| ·实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第41页 |
| ·可溶性蛋白提取和测定 | 第41-42页 |
| ·结果 | 第42-51页 |
| ·热击胁迫诱导UBA上调表达 | 第42-43页 |
| ·构建TRV-UBA1、TRV-UBA2沉默植株 | 第43页 |
| ·沉默植株抗热能力下降 | 第43-44页 |
| ·高温对各株系EL变化的影响 | 第44-45页 |
| ·高温对不同株系光合系统的影响 | 第45-47页 |
| ·各株系HSPs基因表达的变化 | 第47-49页 |
| ·各沉默植株中UBA1和UBA2对热击的响应 | 第49-50页 |
| ·各株系可溶性蛋白含量变化 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-52页 |
| 4 WRKY33调控番茄自噬主导的抗热途径 | 第52-62页 |
| 摘要 | 第52-53页 |
| ·材料与方法 | 第53-54页 |
| ·材料培养和处理 | 第53页 |
| ·叶绿素荧光成像分析和光合气体交换测定 | 第53页 |
| ·构建VIGS沉默载体及转化 | 第53-54页 |
| ·总RNA提取和cDNA合成 | 第54页 |
| ·实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第54页 |
| ·可溶性蛋白测定 | 第54页 |
| ·溶酶体荧光染色分析 | 第54页 |
| ·结果 | 第54-61页 |
| ·构建TRV-WRKY33a、TRV-WRKY33b沉默植株 | 第54-55页 |
| ·沉默植株对热击敏感 | 第55-58页 |
| ·WRKY33沉默后ATG不能被高温诱导上调表达 | 第58页 |
| ·高温处理对可溶性蛋白含量的影响 | 第58-59页 |
| ·溶酶体变化 | 第59-61页 |
| ·讨论 | 第61-62页 |
| 5 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |