| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-26页 |
| ·大肠杆菌细胞周期 | 第10-13页 |
| ·细胞周期的三个环节:B,C和D期 | 第10-11页 |
| ·复制与细胞分裂的协调 | 第11-12页 |
| ·代谢与细胞周期 | 第12-13页 |
| ·大肠杆菌染色体复制起始 | 第13-17页 |
| ·染色体复制原点(oriC) | 第13页 |
| ·复制起始蛋白DnaA | 第13-14页 |
| ·染色体复制起始 | 第14-17页 |
| ·大肠杆菌染色体复制起始调控机制 | 第17-21页 |
| ·正调控 | 第17-19页 |
| ·负调控 | 第19-21页 |
| ·datA序列结构与功能 | 第21-22页 |
| ·datA序列 | 第21页 |
| ·datA序列与DNA复制起始 | 第21-22页 |
| ·datA~S突变体筛选 | 第22页 |
| ·purL、xapR、glgX和pcnB的功能 | 第22-24页 |
| ·purL基因 | 第22-23页 |
| ·xapR基因 | 第23-24页 |
| ·glgX基因 | 第24页 |
| ·pcnB基因 | 第24页 |
| ·研究目的和意义 | 第24-26页 |
| ·目的 | 第24-25页 |
| ·意义 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-36页 |
| ·材料 | 第26-29页 |
| ·菌种,P1噬菌体和质粒 | 第26-27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·培养基和抗生素溶液的配制 | 第27-29页 |
| ·方法 | 第29-36页 |
| ·用pMOR5转化野生型和datA~S突变体 | 第29-31页 |
| ·datA~S突变体的复制式样的测定 | 第31-32页 |
| ·细胞倍增时间的测定 | 第32-33页 |
| ·datA~SdnaA~(TS)双突变体的构建及其表型分析 | 第33-34页 |
| ·datA~S ΔdatA双突变体构建及其细胞倍增时间的测定 | 第34-35页 |
| ·用pMOR1转化野生型和datA~S突变体以及其细胞倍增时间的测定 | 第35-36页 |
| 3 结果 | 第36-46页 |
| ·datA~S突变体在PMOR5的存在下能够生长 | 第36-40页 |
| ·高拷贝datA抑制野生型细胞的生长 | 第36-37页 |
| ·嘌呤浓度影响MG1655purL的生长 | 第37-39页 |
| ·MG1655glgX需要葡萄糖 | 第39-40页 |
| ·datA~S突变体具野生型细胞的复制式样 | 第40-41页 |
| ·datA~S突变体生长缓慢 | 第41-42页 |
| ·datA~S突变提高dnaA~(TS)的温度敏感性 | 第42-44页 |
| ·ΔdatA不影响datA~S突变体的倍增时间 | 第44-45页 |
| ·额外datA不影响datA~S突变体的倍增时间 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |
