| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-9页 |
| 英文缩写表 | 第9-11页 |
| 详细摘要 | 第11-18页 |
| 前言 | 第18-24页 |
| 参考文献 | 第21-24页 |
| 第一部分 骨髓神经组织定向干细胞的分离培养、鉴定及自然分化 | 第24-38页 |
| 1. 研究背景 | 第24-25页 |
| 2. 材料和方法 | 第25-30页 |
| ·试剂和设备 | 第25-26页 |
| ·主要用液配制 | 第26-27页 |
| ·NTCSCs 的分离、培养 | 第27-28页 |
| ·NTCSCs 的鉴定 | 第28-29页 |
| ·NTCSCs 的自然分化 | 第29-30页 |
| 3. 结果 | 第30-34页 |
| ·NTCSCs 的原代培养及多克隆的形成 | 第30-31页 |
| ·NTCSCs 的鉴定 | 第31-32页 |
| ·NTCSCs 的自然分化 | 第32-34页 |
| 4. 讨论 | 第34-35页 |
| ·NTCSCs 的培养 | 第34页 |
| ·NTCSCs 的鉴定 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 第二部分 脱细胞神经支架材料的制备 | 第38-44页 |
| 1. 研究背景 | 第38页 |
| 2. 材料方法 | 第38-40页 |
| ·试剂和设备 | 第38-39页 |
| ·主要用液配制 | 第39页 |
| ·脱细胞神经支架的制备方法 | 第39页 |
| ·形态学观察 | 第39-40页 |
| 3. 结果 | 第40-41页 |
| ·肉眼观察 | 第40页 |
| ·一般形态学观察 | 第40-41页 |
| 4. 讨论 | 第41-42页 |
| ·脱细胞神经支架的优点 | 第41-42页 |
| ·脱细胞神经支架的免疫原性问题 | 第42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 第三部分 骨髓神经组织定向干细胞性组织工程化神经的构建 | 第44-55页 |
| 1. 研究背景 | 第44页 |
| 2. 材料方法 | 第44-50页 |
| ·试剂和设备 | 第44-46页 |
| ·主要用液配制 | 第46-47页 |
| ·骨髓神经组织定向干细胞性组织工程化神经的构建方法 | 第47页 |
| ·组织工程化神经体外培养的鉴定 | 第47-48页 |
| ·RT-PCR 验证 | 第48-50页 |
| 3. 结果 | 第50-52页 |
| ·组织工程化神经的形态学观察 | 第50-51页 |
| ·组织工程化神经的免疫组织化学检测 | 第51页 |
| ·RT-PCR 验证 | 第51-52页 |
| 4. 讨论 | 第52-54页 |
| ·体外构建组织工程化神经的体会 | 第52-53页 |
| ·植入细胞在支架内的生长、分化、迁移 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-55页 |
| 第四部分 骨髓神经组织定向干细胞性组织工程化神经的在体研究 | 第55-71页 |
| 1. 研究背景 | 第55页 |
| 2. 材料和方法 | 第55-62页 |
| ·试剂 | 第55-56页 |
| ·手术器械 | 第56页 |
| ·动物分组及处理 | 第56-57页 |
| ·标本获取及制作 | 第57页 |
| ·术后行为学观察 | 第57-58页 |
| ·神经电生理学检测 | 第58页 |
| ·形态学观察 | 第58-61页 |
| ·HRP 逆行追踪 | 第61-62页 |
| 3. 结果 | 第62-68页 |
| ·术后行为学观察 | 第62页 |
| ·电生理学检测 | 第62-63页 |
| ·形态学观察 | 第63-67页 |
| ·HRP 逆行追踪 | 第67-68页 |
| 4. 讨论 | 第68-69页 |
| ·术后行为学观察 | 第68页 |
| ·组织工程化神经移植后电生理学研究 | 第68页 |
| ·组织工程化神经的形态学研究 | 第68-69页 |
| ·后续实验研究 | 第69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 全文小结 | 第71-72页 |
| 本课题的创新点和意义 | 第72页 |
| 本课题进一步研究工作计划 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 文献综述 骨髓源性组织定向干细胞的研究进展 | 第74-83页 |
| 发表论文 | 第83-90页 |
| 在读期间发表文章目录 | 第90-91页 |
