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农杆菌介导的籼稻遗传转化研究

摘要第1-9页
ABSTRACT第9-12页
第1章 文献综述第12-27页
 1.1 水稻遗传转化方法评述第12-14页
  1.1.1 直接转化法第12-14页
  1.1.2 农杆菌介导法第14页
 1.2 影响农杆菌介导水稻遗传转化效率的因素第14-21页
  1.2.1 转基因受体的影响第15-16页
  1.2.2 水稻基因型第16-17页
  1.2.3 农杆菌菌株和质粒载体第17页
  1.2.4 Vir基因的诱导第17-18页
  1.2.5 农杆菌菌液浓度第18页
  1.2.6 农杆菌悬浮培养基第18页
  1.2.7 农杆菌感染愈伤组织的方式以及共培养的方式第18-19页
  1.2.8 植物培养基和外植体培养条件的影响第19页
  1.2.9 共培养条件第19-20页
  1.2.10 筛选标记基因以及筛选剂的选择第20-21页
 1.3 基因工程技术在水稻遗传改良上的应用第21-27页
  1.3.1 抗病基因工程第22-23页
  1.3.2 抗虫基因工程第23-24页
  1.3.3 抗除草剂基因工程第24页
  1.3.4 抗逆基因工程第24-25页
  1.3.5 基因工程提高水稻光合效率和延缓衰老第25-26页
  1.3.6 品质性状的改良第26页
  1.3.7 培育雄性不育的转基因研究第26-27页
第2章 引言第27-28页
第3章 材料和方法第28-34页
 3.1 材料第28-29页
  3.1.1 供试水稻品种第28页
  3.1.2 农杆菌菌株和质粒第28页
  3.1.3 主要试剂第28-29页
  3.1.4 主要仪器第29页
  3.1.5 培养基第29页
 3.2 方法第29-34页
  3.2.1 影响转化受体再生能力的因素研究第29-30页
  3.2.2 转化受体的选择第30-31页
  3.2.3 潮霉素敏感性试验第31页
  3.2.4 农杆菌菌液制备第31页
  3.2.5 外植体的侵染以及共培养第31页
  3.2.6 不同共培养基浓度对愈伤组织转化的影响第31页
  3.2.7 脱菌第31-32页
  3.2.8 GUS瞬时表达率的检测第32页
  3.2.9 抗性愈伤筛选以及抗性愈伤率的计算第32页
  3.2.10 抗性愈伤分化第32页
  3.2.11 转基因植株的GUS检测第32页
  3.2.12 转基因植株的PCR验证第32-33页
  3.2.13 不同基因型以及外植体类型转化率的比较第33-34页
第4章 结果与分析第34-43页
 4.1 影响转化受体再生能力的因素研究第34-36页
  4.1.1 不同基因型在不同培养基上愈伤组织诱导频率的比较第34-35页
  4.1.2 不同基因型愈伤组织再生能力比较第35页
  4.1.3 分化培养基中不同激素浓度配比对釉稻JH35再生频率的影响第35-36页
  4.1.4 干燥处理对籼稻品种再生的影响第36页
 4.2 潮霉素敏感性试验第36-37页
 4.3 As对转化效率的影响分析第37页
 4.4 与农杆菌共培养时间对转化率的影响第37-38页
 4.5 菌液浓度对转化效率的影响第38-39页
 4.6 共培养基浓度对转化率的影响第39-40页
 4.7 转化受体类型和基因型对转化效率的影响第40-43页
第5章 讨论第43-50页
 5.1 转化受体的再生能力第43-44页
  5.1.1 不同激素配比对愈伤组织诱导的影响第43页
  5.1.2 基因型对再生频率的影响第43-44页
  5.1.3 培养基的成分对愈伤诱导及再生的影响第44页
  5.1.4 水分胁迫对分化率的影响第44页
 5.2 转化受体类型及生理状态对转化频率的影响第44-45页
 5.3 菌株、载体、选择性标记基因及启动子对转化效率的影响第45-46页
 5.4 酚类化合物和单糖对转化频率的影响第46-47页
 5.5 共培养时几个因素对转化效率的影响第47-48页
 5.6 转基因的表达及遗传特点第48-50页
第6章 结论第50-52页
参考文献第52-60页
致谢第60-61页
附录第61-63页
 附录1 缩略词表第61-62页
 附录2 本研究所用培养基配方第62-63页

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