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桃(Prunus persica(L.) Batsch)白肉机因(Y)和离核基因(F)的SCAR标记转化

文献综述第1-16页
 1 分子标记及其在果树上的应用第7-16页
  1.1 分子标记类型第7-9页
   1.1.1 RFLP第7-8页
   1.1.2 RAPD第8页
   1.1.3 AFLP第8页
   1.1.4 SSR第8-9页
   1.1.5 SCAR第9页
  1.2 分子标记在果树上的应用第9-16页
   1.2.1 利用分子标记进行果树种质资源鉴定和管理第9-10页
   1.2.2 构建分子遗传图谱第10-11页
   1.2.3 果树基因的标记第11-13页
   1.2.4 分子标记辅助育种第13-16页
引言第16-17页
材料与方法第17-22页
 1 材料第17-18页
  1.1 桃材料第17页
  1.2 试验背景材料第17-18页
  1.3 药品与试剂第18页
 2 方法第18-22页
  2.1 桃DNA的提取第18-19页
  2.2 用于PCR的模板DNA的制备第19页
  2.3 引物设计第19-21页
  2.4 PCR体系第21-22页
  2.5 PCR程序第22页
  2.6 RAPD标记转化为SCAR标记第22页
结果与分析第22-33页
 1 桃模板DNA的制备第22-23页
 2 RAPD体系的优化结果第23-26页
  2.1 Mg~(2+)最适浓度的确定第23-24页
  2.2 引物最适浓度的选择第24页
  2.3 模板DNA最适浓度的选择第24-25页
  2.4 TaqDNA聚合酶最佳浓度的选择第25页
  2.5 dNTP最佳浓度的选择第25-26页
 3 SCAR标记的转化第26-33页
  3.1 与桃白肉基因(Y)连锁的SCAR标记的转化第26-29页
   3.1.1 与桃白肉基因(Y)连锁的SCAR标记的引物设计第26-27页
   3.1.2 SCAR标记的转化第27-29页
  3.2 与桃离核基因(F)连锁的SCAR标记的转化第29-33页
   3.2.1 退火温度的确定第29页
   3.2.2 引物确定与SCAR标记转化第29-33页
    ① 11bp引物确定第29页
    ② 12bp引物确定第29-30页
    ③ SCAR标记的转化第30-33页
结论与讨论第33-37页
 1 讨论第33-36页
  1.1 RAPD体系的优化第33-34页
  1.2 SCAR标记的转化第34-36页
 2 结论第36-37页
参考文献第37-42页
英文摘要第42-43页
致谢第43页

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