| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 1 绪论 | 第8-18页 |
| ·前言 | 第8页 |
| ·蜂蜜中抗生素残留的原因 | 第8-9页 |
| ·几类常用抗生素介绍 | 第9-10页 |
| ·硝基咪唑类(Nitromidazoles, NZs) | 第9页 |
| ·四环素类(Tetracyclines, TCs) | 第9页 |
| ·氯霉素(Chloramphenicol, CAP) | 第9页 |
| ·喹诺酮类(Quinolones, QNs) | 第9页 |
| ·磺胺类(Sulfonamides, SAs) | 第9-10页 |
| ·抗生素残留检测常用方法 | 第10页 |
| ·微生物法 | 第10页 |
| ·免疫法 | 第10页 |
| ·其他方法 | 第10页 |
| ·液相色谱技术在抗生素残留分析中的研究进展 | 第10-15页 |
| ·液质联用技术 | 第10-11页 |
| ·高效液相色谱法 | 第11-15页 |
| ·立题背景和意义 | 第15-16页 |
| ·主要研究内容 | 第16-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-20页 |
| ·材料 | 第18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18页 |
| ·实验方法 | 第18-20页 |
| ·标准溶液的配制 | 第18页 |
| ·液相色谱条件 | 第18-19页 |
| ·样品预处理 | 第19页 |
| ·测量不确定度评定与表示 | 第19-20页 |
| 3 结果与讨论 | 第20-44页 |
| ·液相色谱方法建立 | 第20-24页 |
| ·紫外检测波长的确定 | 第20页 |
| ·色谱柱的选择 | 第20-21页 |
| ·流动相组成及pH 的选择 | 第21-22页 |
| ·柱温优化 | 第22-23页 |
| ·流速优化 | 第23-24页 |
| ·混合标准溶液的色谱图 | 第24页 |
| ·样品前处理条件优化 | 第24-28页 |
| ·固相萃取小柱的选择 | 第24-25页 |
| ·提取液pH 的优化 | 第25-26页 |
| ·洗脱条件的优化 | 第26-27页 |
| ·空白蜂蜜样品及加标样品的色谱图 | 第27-28页 |
| ·液相色谱方法学验证 | 第28-31页 |
| ·标准曲线及线性范围 | 第28-29页 |
| ·回收率和精密度 | 第29-30页 |
| ·方法检测限（LOD）和定量限（LOQ） | 第30-31页 |
| ·方法实际应用 | 第31-37页 |
| ·三种不同品牌蜂蜜色谱图 | 第31-34页 |
| ·三种不同品牌蜂蜜加标回收率的检测 | 第34-37页 |
| ·高效液相色谱法检测蜂蜜中15 种抗生素残留的不确定度分析 | 第37-44页 |
| ·标准溶液浓度的相对标准不确定度urel(C) | 第38-40页 |
| ·混合标准工作液峰面积重复性的不确定度urel(A) | 第40页 |
| ·样品称量过程中的相对标准不确定度urel(my) | 第40页 |
| ·样品前处理过程中的相对标准不确定度urel(Vq) | 第40-41页 |
| ·重复测量加标回收率过程中的相对标准不确定度urel(rec) | 第41页 |
| ·合成相对标准不确定度urel(w)及扩展不确定度 | 第41-42页 |
| ·检测结果报告 | 第42-44页 |
| 4 结论与展望 | 第44-46页 |
| ·结论 | 第44-45页 |
| ·展望 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第54页 |
