| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-42页 |
| 1 保护生物学、生物多样性与药用植物资源 | 第14-15页 |
| 2 干旱胁迫下植物的生理生态学研究 | 第15-18页 |
| ·干旱胁迫对植物生长、生物量积累与分配的影响 | 第15-16页 |
| ·干旱胁迫对植物光合色素的影响 | 第16页 |
| ·干旱胁迫对植物保护酶和保护物质活性的影响 | 第16-18页 |
| 3 UV-B辐射对植物作用的研究进展 | 第18-24页 |
| ·UV-B辐射对植物形态学特征和个体生长发育的影响 | 第18-19页 |
| ·UV-B辐射对植物生理生化特征的影响 | 第19-21页 |
| ·UV-B辐射与其它因子复合对植物影响 | 第21-22页 |
| ·植物对UV-B辐射的防御机制 | 第22-23页 |
| ·UV-B辐射对植物居群及生态系统的影响 | 第23-24页 |
| 4 荞麦属植物研究进展 | 第24-31页 |
| ·遗传多样性 | 第24-28页 |
| ·生化分子标记 | 第25-26页 |
| ·核型以及结构变异 | 第26-27页 |
| ·分子标记 | 第27-28页 |
| ·化学成分和生物活性 | 第28-30页 |
| ·化学成分 | 第28-29页 |
| ·生物活性 | 第29-30页 |
| ·药用价值和开发利用 | 第30-31页 |
| ·药用价值 | 第30页 |
| ·开发利用 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-42页 |
| 第2章 绪论 | 第42-48页 |
| 1 选题依据、研究目的与意义 | 第42页 |
| 2 科学问题 | 第42-43页 |
| 3 研究内容和技术路线 | 第43页 |
| 4 供试植物 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 第3章 金荞麦和荞麦生物量积累与分配对增强UV-B辐射及不同干旱水平处理的可塑性响应 | 第48-78页 |
| 1 引言 | 第48-49页 |
| 2 材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料与实验设计 | 第49页 |
| ·生物量测定方法 | 第49-50页 |
| ·数据处理 | 第50页 |
| 3 结果与分析 | 第50-72页 |
| ·金荞麦和荞麦生物量积累对UV-B辐射及干旱处理的可塑性响应. | 第50-59页 |
| ·根生物量积累 | 第50-53页 |
| ·茎生物量积累 | 第53-55页 |
| ·叶生物量积累 | 第55-57页 |
| ·花序生物量积累 | 第57页 |
| ·总生物量积累 | 第57-59页 |
| ·金荞麦和荞麦生物量配置对UV-B辐射及干旱处理的可塑性响应. | 第59-67页 |
| ·根生物量配置 | 第59-61页 |
| ·茎生物量配置 | 第61-63页 |
| ·叶生物量配置 | 第63-65页 |
| ·花序生物量配置 | 第65-67页 |
| ·金荞麦与荞麦在UV-B辐射及干旱处理下生物量积累和分配可塑性差异比较 | 第67-72页 |
| ·生物量积累可塑性 | 第67-69页 |
| ·生物量配置可塑性 | 第69-70页 |
| ·生物量综合特征平均可塑性 | 第70-72页 |
| 4 讨论 | 第72-75页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 第4章 金荞麦和荞麦叶光合色素对增强UV-B辐射及干旱胁迫处理的可塑性响应 | 第78-102页 |
| 1 引言 | 第78页 |
| 2 材料与方法 | 第78-79页 |
| ·材料与实验设计 | 第78-79页 |
| ·光合色素的提取和含量测定 | 第79页 |
| ·数据处理 | 第79页 |
| 3 结果与分析 | 第79-96页 |
| ·金荞麦和荞麦叶光合色素对UV-B辐射及干旱处理的可塑性响应. | 第79-93页 |
| ·叶绿素a含量 | 第79-82页 |
| ·叶绿素b含量 | 第82-84页 |
| ·总叶绿素含量 | 第84-85页 |
| ·叶绿素a/叶绿素b | 第85-87页 |
| ·类胡萝卜素含量 | 第87-89页 |
| ·类胡萝卜素/叶绿素 | 第89-93页 |
| ·金荞麦与荞麦在UV-B辐射及干旱处理下光合色素可塑性差异比较 | 第93-96页 |
| ·光合色素可塑性 | 第93-94页 |
| ·光合色素平均可塑性 | 第94-96页 |
| 4 讨论 | 第96-99页 |
| 参考文献 | 第99-102页 |
| 第5章 金荞麦和荞麦叶保护酶与保护物质对增强UV-B辐射及干旱胁迫处理的可塑性响应 | 第102-132页 |
| 1 引言 | 第102页 |
| 2 材料与方法 | 第102-104页 |
| ·材料与实验设计 | 第102-103页 |
| ·测定方法 | 第103-104页 |
| ·酶液的提取 | 第103页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第103页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第103页 |
| ·总黄酮含量测定 | 第103页 |
| ·游离脯氨酸含量测定 | 第103-104页 |
| ·丙二醛含量测定 | 第104页 |
| ·可溶性蛋白含量测定 | 第104页 |
| ·可溶性糖含量测定 | 第104页 |
| ·数据处理 | 第104页 |
| 3 结果与分析 | 第104-124页 |
| ·金荞麦和荞麦叶保护酶活性保护物质含量对UV-B辐射及干旱处理的可塑性响应 | 第104-120页 |
| ·叶SOD活性 | 第104-106页 |
| ·叶POD活性 | 第106-108页 |
| ·叶总黄酮含量 | 第108-111页 |
| ·叶游离脯氨酸含量 | 第111-113页 |
| ·叶丙二醛含量 | 第113-114页 |
| ·叶可溶性蛋白含量 | 第114-116页 |
| ·叶可溶性糖含量 | 第116-120页 |
| ·金荞麦与荞麦在UV-B辐射及干旱处理下叶保护酶和保护物质可塑性差异比较 | 第120-124页 |
| ·叶保护酶和保护物质可塑性 | 第120-122页 |
| ·叶保护酶和保护物质平均可塑性 | 第122-124页 |
| 4 讨论 | 第124-127页 |
| 参考文献 | 第127-132页 |
| 第6章 总结 | 第132-136页 |
| 致谢 | 第136-138页 |
| 发表论文及参加课题一览表 | 第138页 |
