| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-15页 |
| 目录 | 第15-19页 |
| 1 引言 | 第19-33页 |
| ·农药概述 | 第19-20页 |
| ·农药残留污染及控制技术研究现状 | 第20-23页 |
| ·农药残留污染现状及产生的负面效应 | 第20-21页 |
| ·农药残留污染控制技术研究现状 | 第21-23页 |
| ·蔬菜生产中的农药残留问题 | 第23-24页 |
| ·农药在植物体中的降解代谢 | 第24-27页 |
| ·农药在植物体内降解代谢的基本过程 | 第24-25页 |
| ·细胞色素P450在植物体Ⅰ相解毒代谢中的调控作用 | 第25页 |
| ·谷胱甘肽的轭合反应在植物体Ⅱ相解毒代谢中的调控作用 | 第25-27页 |
| ·ABC膜转运蛋白在植物体Ⅲ相解毒代谢中的调控作用 | 第27页 |
| ·油菜素内酯在植物抗逆防御中的调控作用 | 第27-30页 |
| ·油菜素内酯的广谱抗逆作用 | 第28-29页 |
| ·油菜素内酯信号转导模型 | 第29-30页 |
| ·油菜素内酯信号转导与抗逆的关系 | 第30页 |
| ·本文研究的目的和意义 | 第30-33页 |
| 2 不同化学性质的农药对番茄生理及解毒酶活力和基因表达的影响 | 第33-52页 |
| ·材料与方法 | 第34-38页 |
| ·材料培养和试验设计 | 第34-35页 |
| ·气体交换及叶绿素荧光参数的测定 | 第35页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第35页 |
| ·解毒相关酶GST,GR,POD活力测定 | 第35-36页 |
| ·离体GST酶对不同底物的活力测定 | 第36页 |
| ·可溶性蛋白的测定 | 第36页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成 | 第36-37页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第37-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-50页 |
| ·不同化学性质的农药对番茄光合及叶绿素荧光参数的影响 | 第38-39页 |
| ·不同浓度的CHT和CPF对番茄生长的影响 | 第39-40页 |
| ·CHT,CAR,CPF和BIF对番茄GSH含量的影响 | 第40-41页 |
| ·CHT,CAR,CPF和BIF对GST,GR,POD酶活力的影响 | 第41-42页 |
| ·番茄离体GST酶对不同底物的催化活力 | 第42-43页 |
| ·不同化学性质的农药对解毒途径中相关基因表达的影响 | 第43-44页 |
| ·不同浓度的CHT和CPF对解毒酶活力的影响 | 第44-46页 |
| ·不同浓度的CHT和CPF对相关解毒基因表达的影响 | 第46-48页 |
| ·CHT和CPF对解毒基因诱导的时间变化 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 3 BRs缓解CHT和CPF药害与解毒酶活力及基因表达的关系 | 第52-65页 |
| ·材料与方法 | 第53-54页 |
| ·材料培养和试验设计 | 第53-54页 |
| ·气体交换及叶绿素荧光参数的测定 | 第54页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第54页 |
| ·解毒相关酶活力和可溶性蛋白含量测定 | 第54页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-62页 |
| ·BRs对CHT和CPF抑制的气体交换和叶绿素荧光参数的缓解 | 第54-58页 |
| ·不同BRs水平的番茄植株中谷胱甘肽含量的变化 | 第58-59页 |
| ·番茄BRs合成突变与GST酶活力的关系 | 第59页 |
| ·番茄BRs合成突变与解毒基因表达的关系 | 第59-61页 |
| ·不同浓度EBR对GST,GR酶活力和解毒基因表达的影响 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-65页 |
| 4 BRs激活农药代谢相关酶活力和基因表达调控番茄叶片中百菌清的降解 | 第65-80页 |
| ·材料与方法 | 第67-69页 |
| ·材料培养和试验设计 | 第67页 |
| ·百菌清残留量的测定 | 第67-68页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第68页 |
| ·解毒相关酶活力和可溶性蛋白含量测定 | 第68页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第68页 |
| ·CHT代谢产物鉴定 | 第68-69页 |
| ·结果与分析 | 第69-78页 |
| ·不同浓度的EBR对番茄叶片中CHT残留降解率的影响 | 第69页 |
| ·番茄BRs合成缺失突变体和野生型叶片中CHT残留动态变化 | 第69-71页 |
| ·不同BRs水平的番茄处理CHT后的GST酶活力 | 第71-73页 |
| ·不同BRs水平的番茄处理CHT后的GSH含量 | 第73-74页 |
| ·抑制GSH合成对CHT残留量、GST酶活力和基因表达的影响 | 第74-76页 |
| ·CHT代谢产物的LC/MS/MS鉴定 | 第76-78页 |
| ·讨论 | 第78-80页 |
| 5 H_2O_2介导BRs促进农药降解代谢的信号作用 | 第80-91页 |
| ·材料与方法 | 第81-83页 |
| ·材料培养和试验设计 | 第81-82页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第82页 |
| ·H_2O_2组织化学染色 | 第82页 |
| ·谷胱甘肽含量的测定 | 第82页 |
| ·解毒相关酶活力和可溶性蛋白含量测定 | 第82页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第82页 |
| ·农药残留量的测定 | 第82-83页 |
| ·结果与分析 | 第83-87页 |
| ·BRs对H_2O_2产生和RBOH基因表达的诱导作用 | 第83页 |
| ·H_2O_2含量和RBOH基因表达与CHT残留量的关系 | 第83-86页 |
| ·不同H_2O_2水平的番茄植株中GSH的含量 | 第86页 |
| ·不同H_2O_2水平的番茄植株中GST,GR酶活性 | 第86页 |
| ·不同H_2O_2水平的番茄植株中解毒基因的表达丰度 | 第86-87页 |
| ·讨论 | 第87-91页 |
| 6 利用芯片分析农药和BRs对番茄转录组的影响 | 第91-103页 |
| ·材料与方法 | 第92-93页 |
| ·材料培养和试验设计 | 第92-93页 |
| ·总RNA提取和纯化 | 第93页 |
| ·芯片杂交及数据处理 | 第93页 |
| ·结果与分析 | 第93-101页 |
| ·芯片数据可靠性评价 | 第93-94页 |
| ·试验处理基因表达整体水平 | 第94-95页 |
| ·农药处理后差异基因的GO分类 | 第95页 |
| ·预处理EBR后再处理农药的差异基因的GO分类 | 第95-98页 |
| ·EBR和农药共调控基因的GO分类 | 第98页 |
| ·预处理EBR诱导大量基因的高表达 | 第98-101页 |
| ·讨论 | 第101-103页 |
| 7 总结与展望 | 第103-107页 |
| ·结论 | 第103-105页 |
| ·农药对番茄的光合作用,叶绿素荧光参数和生长的影响 | 第103页 |
| ·农药对植物体解毒途径中一系列参数的影响 | 第103-104页 |
| ·BRs在缓解农药抑制番茄光合作用和保护PSII中的作用 | 第104页 |
| ·BRs在促进植物体内源农药降解及其机理 | 第104页 |
| ·H_2O_2在BRs加速农药降解代谢中的信号作用 | 第104-105页 |
| ·BRs和农药对番茄转录本的影响 | 第105页 |
| ·展望 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-125页 |
| 作者简历 | 第125页 |
