| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-24页 |
| 1.1 镉污染研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 Cd胁迫下植物耐受机理的研究 | 第15-18页 |
| 1.2.1 限制Cd的吸收 | 第15-16页 |
| 1.2.2 抗氧化防御系统的响应 | 第16页 |
| 1.2.3 区室化与螯合作用 | 第16-17页 |
| 1.2.4 跨膜运输 | 第17-18页 |
| 1.2.5 与信号分子互作 | 第18页 |
| 1.3 H_2S缓解植物重金属胁迫的研究进展 | 第18-23页 |
| 1.3.1 植物内源H_2S的代谢 | 第19-20页 |
| 1.3.2 H_2S参与植物对非生物胁迫的响应 | 第20-21页 |
| 1.3.3 外源H_2S缓解植物重金属毒害 | 第21-22页 |
| 1.3.4 H_2S与植物对重金属胁迫的耐受性 | 第22-23页 |
| 1.4 研究的目的与意义 | 第23-24页 |
| 第二章 镉污染农田及水培条件下红麻的适应机制 | 第24-38页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 大田试验 | 第24-25页 |
| 2.1.2 水培试验 | 第25-26页 |
| 2.1.3 数据处理 | 第26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-34页 |
| 2.2.1 Cd污染农田中红麻对Cd的富集与适应性 | 第26-27页 |
| 2.2.2 水培条件下红麻对Cd的富集与适应性 | 第27-28页 |
| 2.2.3 水培Cd处理下红麻幼苗的生理响应 | 第28-31页 |
| 2.2.4 水培Cd处理下红麻幼苗耐性相关基因的表达 | 第31-34页 |
| 2.3 讨论与结论 | 第34-38页 |
| 2.3.1 红麻对Cd的富集与适应性 | 第34-35页 |
| 2.3.2 水培Cd处理下红麻幼苗的生理响应 | 第35-36页 |
| 2.3.3 水培Cd处理下红麻幼苗耐性相关基因的表达 | 第36-38页 |
| 第三章 外源硫化氢对红麻幼苗镉毒害的缓解效应 | 第38-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第38-39页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第38页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第38-39页 |
| 3.1.3 数据处理 | 第39页 |
| 3.2 结果与分析 | 第39-46页 |
| 3.2.1 外源H_2S的最佳缓解浓度 | 第39-40页 |
| 3.2.2 外源H_2S对 Cd胁迫下红麻幼苗生长和Cd富集的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.3 外源H_2S对 Cd胁迫下红麻幼苗生理特性的影响 | 第41-45页 |
| 3.2.4 外源H_2S对 Cd胁迫下红麻幼苗耐性相关基因表达的影响 | 第45-46页 |
| 3.3 讨论与结论 | 第46-50页 |
| 3.3.1 外源H_2S对红麻Cd毒害的缓解效应 | 第46-47页 |
| 3.3.2 外源H_2S对 Cd胁迫下红麻幼苗生理特性的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.3 外源H_2S对 Cd胁迫下红麻幼苗耐性相关基因表达的影响 | 第48-50页 |
| 第四章 外源硫化氢对镉胁迫下红麻幼苗转录组的影响 | 第50-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第50页 |
| 4.1.2 试验处理 | 第50页 |
| 4.1.3 RNA提取与质量检测 | 第50页 |
| 4.1.4 cDNA文库构建与测序 | 第50-51页 |
| 4.1.5 qRT-PCR验证 | 第51-52页 |
| 4.2 结果与分析 | 第52-64页 |
| 4.2.1 RNA质量检测与测序质量评估 | 第52-54页 |
| 4.2.2 转录组拼接 | 第54页 |
| 4.2.3 RNA-Seq整体评估 | 第54-55页 |
| 4.2.4 SNP与 InDel分析 | 第55-56页 |
| 4.2.5 基因功能注释 | 第56-58页 |
| 4.2.6 差异表达分析 | 第58-64页 |
| 4.2.7 qRT-PCR验证 | 第64页 |
| 4.3 讨论与结论 | 第64-67页 |
| 第五章 红麻HcGST和 HcMGL的克隆及功能分析 | 第67-81页 |
| 5.1 材料与方法 | 第67-70页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第67页 |
| 5.1.2 菌种与载体 | 第67页 |
| 5.1.3 培养条件 | 第67-68页 |
| 5.1.4 红麻GST和 MGL基因的克隆 | 第68页 |
| 5.1.5 植物表达载体的构建 | 第68-69页 |
| 5.1.6 农杆菌介导的拟南芥遗传转化 | 第69-70页 |
| 5.1.7 过表达红麻HcGST和 HcMGL拟南芥的培养及检测 | 第70页 |
| 5.1.8 取样与分析 | 第70页 |
| 5.1.9 数据处理 | 第70页 |
| 5.2 结果与分析 | 第70-78页 |
| 5.2.1 红麻HcGST和 HcMGL基因的克隆及过表达载体的构建 | 第70-71页 |
| 5.2.2 HcMGL和HcGST过表达载体的构建 | 第71页 |
| 5.2.3 农杆菌介导的拟南芥遗传转化 | 第71-72页 |
| 5.2.4 转基因株系的表型分析 | 第72页 |
| 5.2.5 镉含量分析 | 第72-74页 |
| 5.2.6 MDA和H_2O_2含量分析 | 第74页 |
| 5.2.7 AsA和 GSH含量分析 | 第74-75页 |
| 5.2.8 抗氧化保护酶活性分析 | 第75-76页 |
| 5.2.9 耐Cd相关基因表达分析 | 第76-78页 |
| 5.3 讨论与结论 | 第78-81页 |
| 第六章 全文总结 | 第81-83页 |
| 6.1 全文总结 | 第81-82页 |
| 6.2 创新点 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 作者简历 | 第99页 |
